5.
Необходимо для работы:
Проведение работы:
Цель работы:
Необходимо для работы:
Проведение работы:
не взбалтывать
· отсутствует гемолиз;
· частичный гемолиз;
· полный гемолиз.
Определение полей зрения.
Определение остроты зрения.
16. Дыхательные объемы и емкости. Методика определения ЖЕЛ. Спирография и спирометрия.
Применение миографии
· В психофизиологии для изучения возрастных закономерностей.
· В медицине для диагностики поражений периферической и центральной нервной системы.
· В физиологии труда и спорта.
· При изучении двигательной функции животных и человека.
· В исследованиях высшей нервной деятельности.
· В инженерной психологии (например, при исследовании утомления, выработки двигательного навыка).
· Для оценки при восстановлении нарушенной двигательной функции в ортопедии и протезировании.
Таблица 36
Затраты на основной обмен здоровых людей в зависимости от возраста и пола
Разница между показателями должного основного обмена, рассчитанными разными методами, обычно не превышает 10 %.
Термометрия.
Температура тела - важный показатель состояния здоровья человека. Нормальной температурой тела для взрослых в состоянии бодрствования и физиологического покоя (при измерении в подмышечной впадине) считается температура от 36°С до 36,9°С. Однако следует учитывать, что во время сна с 3 до 5 ч утра температура тела может достигать минимальных значений - 35,1–36,0°С. Таким образом, норма температуры тела при измерении в подмышечной впадине составляет 36±0,9°С (35,1 - 36,9°С). Температура 37°С и выше рассматривается как повышенная (гипертермия ), а 35°С и ниже – как пониженная (гипотермия ). При измерении в глубоких областях тела (прямой кишке, пищеводе) ее нормальные значения на 0,5°С выше, чем в подмышечной ямке.
Цель работы - определение минимального времени, необходимого для точного измерения аксиллярной температуры ртутными или электронными медицинскими термометрами в подмышечной впадине.
Материалы и оборудование: максимальный ртутный термометр, секундомер, 70 % спирт, вата.
Ход работы. Кожа подмышечной ямки должна быть сухой, так как при влажной коже термометр будет показывать более низкие значения температур из-за испарения влаги с поверхности ртутного резервуара. Обследуемый должен удерживать термометр в течение всего времени измерения, плотно прижав плечо к туловищу. Во время измерения температуры человек должен находиться в состоянии бодрствования и полного покоя.
Осмотрите медицинский термометр, убедитесь в его целости и протрите спиртом. Встряхните термометр до температуры 35°С. Поместите термометр в подмышечную впадину. Запишите показания термометра через 3, 5, 8, 10, 15 мин. Затем проведите термометрию с помощью электронного термометра, записывая показания шкалы прибора через 30 с, 1, 2, 3, 5, 8, 10, 15 мин. При выполнении работы необходимо следить, чтобы головка ртутного и кончик датчика электрического термометров удерживались по среднеаксиллярной линии.
По результатам опытов постройте графики показаний ртутного и электронного термометров в зависимости от времени измерения температуры.
Вывод: у испытуемого температура тела, измеренная в подмышечной впадине _____, длительность ее измерения ртутным должна быть не менее ___ мин.
21. Методика образования условных рефлексов.
Для образования условного рефлекса требуются определенные условия. Условным раздражителем, или сигналом, может быть любое изменение, возникшее во внешней среде или внутри организма. На каждый условный раздражитель (зажигание лампочки, музыкальные звуки, шумы, давление на поверхность кожи, прикосновение, чесание, укол, запах и т.п.) может быть выработан условный рефлекс.
Для образования условного рефлекса на условный (безразличный) раздражитель надо, чтобы этот условный сигнал предшествовал безусловному и в течение некоторого времени действия последнего сопровождал его. Например, звонок (условный сигнал) должен начать звенеть на 5–30 с раньше, чем собака получит корм (безусловный стимул), и некоторое время сопровождать еду. Для того, чтобы выработался условный рефлекс, надо несколько раз повторять такое сочетание.
Если сочетать условный раздражитель с пищевым подкреплением, то вскоре на этот, ранее безразличный раздражитель, образуется условный рефлекс. Один и тот же сигнал может стать раздражителем при выработке разных условных рефлексов. В одном случае звонок может вызвать слюноотделение, а в другом – оборонительный рефлекс и т.д. Это объясняется тем, что характер условного рефлекса определяется подкрепляющим безусловным рефлексом, т.е. условные рефлексы образуются на основе безусловных.
И.П. Павлов разработал методику образования условных рефлексов. Собаку помещают в специальную камеру, полностью изолированную от окружающего мира (никакие раздражители из внешней среды не должны проникать в камеру). Вне камеры находится и сам экспериментатор. При помощи специальной аппаратуры создаются разнообразные раздражители, выдается пищевое подкрепление, регистрируется слюноотделение и т.д. Вначале И.П. Павлов построил полностью изолированную камеру, однако позже выяснилось, что такая абсолютная изоляция не обязательна.
Таким образом, для образования условных рефлексов необходимы следующие специальные условия.
1. Наличие двух раздражителей: индифферентного (безразличного), который хотят сделать условным, и безусловного, вызывающего какую-либо деятельность организма, например отделение слюны, отдергивание лапы и т.п.
2. Индифферентный раздражитель (свет, звук и т.п.) должен предшествовать безусловному и некоторое время сопровождать действие последнего.
3. Безусловный раздражитель должен быть сильнее условного: для сытой собаки с низкой возбудимостью пищевого центра звонок не станет условным пищевым раздражителем.
4. Отсутствие отвлекающих посторонних раздражителей.
5. Активное состояние коры. Это верно и для человека. Если лекция не интересна и развивается полудремотное состояние, то материал не запоминается. Живая эмоциональная лекция с интересными примерами запоминается хорошо.
Электроэнцефалограмма (ЭЭГ) как метод регистрации электрических явлений в коре больших полушарий. Классификация ритмов ЭЭГ.
Электроэнцефалография (ЭЭГ) представляет собой метод регистрации биоэлектрической активности головного мозга, производимой через неповрежденные покровы головы.
Электрокортикография (ЭКоГ) - регистрация ведется с наложением электродов непосредственно на поверхность мозга. Введение электродов в глубокие отделы мозга позволяет провести электросубкортикографию (ЭСКоГ).
Краткая характеристика ЭЭГ здорового человека . В большинстве случаев у здорового бодрствующего человека, находящегося в положении лежа с закрытыми глазами или в темноте, регистрируются относительно регулярные, близкие к синусоидальным колебания биопотенциалов мозга, которые являются результатом множества электрических процессов в различных образованиях его, слагающихся в сложную волнообразную кривую, к которой условно применяют понятие о частоте, амплитуде, фазовых состояниях.
Особенно высокие и устойчивые кривые регистрируются в теменно-затылочной области, одиночные или групповые - в других отделах мозга. Эти кривые Н. Berger (1929) назвал альфа-ритмом; их напряжение при записи через электроды, расположенные на коже, колеблется в пределах 50-100 мкВ (в среднем 40 - 50 мкВ), продолжительность 60-140 мс и частота 8-13 колебаний в секунду. Редко они сохраняют устойчивость, амплитуда волн то убывает, го увеличивается, давая рисунок «веретен», «вздутий», «биений». Альфа-ритм преобладает на ЭЭГ здоровых взрослых людей в 70% случаев, у остальных выражен слабо или отсутствует (до 10% случаев). В передних отделах мозга, а также при подавлении альфа-активности внешними раздражениями выявляются бета-волны. Частота их в среднем равна 25 колебаниям в секунду и изменяется от 15 до 30 колебаний в секунду; волны большей частоты называются гамма-волнами.
Амплитуда бета-волн в 3-4 раза ниже, чем альфа-волн, и в некоторых записях эти колебания почти не различаются. Ткани, покрывающие мозг, оказывают большое электросопротивление (5*103-15*103 Ом) и снижают биопотенциалы в 5-10 раз, причем амплитуда быстрых колебаний уменьшается быстрее по сравнению с медленными волнами.
Основы классификации ритмов электроэнцефалограммы (ЭЭГ):
Традиционная ЭЭГ (диапазон частот 0,5-100 Гц):
Гамма-ритм (частота более 40 Гц, амплитуда менее 15 мкВ);
Бета-ритм (частота 14-40 Гц, амплитуда менее 25 мкВ);
Альфа-ритм (частота 8-13 Гц, амплитуда 10-150 мкВ);
Тета-ритм (частота 4-7 Гц, амплитуда 75-150 мкВ);
Дельта-ритм (частота 0,5-3 Гц, амплитуда свыше 100 мкВ).
Сверхмедленная биоэлектрическая активность
(диапазон частот менее 0,5Гц):
Секундные или дзета-волны (частота 0,1-0,5 Гц, период от 2 до 10 секунд, амплитуда менее десятки и сотни мкВ);
Многосекундные или тау-волны (частота 0,0167-0,1 Гц, период от 10 до 60 секунд, амплитуда сотни мкВ)
Минутные и многоминутные или эпсилон-волны (частота менее 0,0167 Гц, период от 1 минуты и более, амплитуда сотни мкВ, единицы и десятки мВ)
Относительно постоянный потенциал милливольтового диапазона или омега-потенциал (устойчив в течение часов, амплитуда ± 110 мВ)
Рецепторы, их классификация: по локализации (мембранные, ядерные), механизму развития процессов (ионо- и метаьотропные), по скорости приема сигнала (быстрые, медленные), по роду вопринимающих веществ.
Рецепторы представляют собой конечные специализированные образования, предназначенные для трансформации энергии различных видов раздражителей в специфическую активность нервной системы.
Классификация:
по локализации
· мембранные
· ядерные
по механизму развития процессов
· ионотропные (представляют собой мембранные каналы, открываемые или закрываемые при связывании с лигандом. Возникающие при этом ионные токи вызывают изменения трансмембранной разности потенциалов и, вследствие этого, возбудимости клетки, а также меняют внутриклеточные концентрации ионов, что может вторично приводитъ к активации систем внутриклеточных посредников. Одним из наиболее полно изученных ионотропных рецепторов является н-холинорецептор.)
· метаботропные (связаны с системами внутриклеточных посредников. Изменения их конформации при связывании с лигандом приводит к запуску каскада биохимических реакций, и, в конечном счете, изменению функционального состояния клетки.)
по скорости приема сигнала
· быстрые
· медленные
по роду вопринимающих веществ
· Хеморецепторы - воспринимают воздействие растворенных или летучих химических веществ.
· Осморецепторы - воспринимают изменения осмотической концентрации жидкости (как правило, внутренней среды).
· Механорецепторы - воспринимают механические стимулы (прикосновение, давление, растяжение, колебания воды или воздуха и т. п.)
· Фоторецепторы - воспринимают видимый и ультрафиолетовый свет
· Терморецепторы - воспринимают понижение (холодовые) или повышение (тепловые) температуры
· Барорецепторы – воспринимают изменение давления
3. Ионотропные рецепторы, метаботпропные рецепторы и их разновидности. Системы вторичных посредников действия метаботропных рецепторов (цАМФ, цГМФ, инозитол-3-фосфат, диацилглицерол, ионы Са++).
На постсинаптической мембране выделяют два типа рецепторов - ионотропные и метаботропные.
Ионотропнный
В случае ионотропного рецептора
чувствительная молекула содержит не только активный центр для связывания медиатора, но также ионный канал. Воздействие «первичного посредника» (медиатора) на рецептор приводит к быстрому открыванию канала и развитию постсинаптического потенциала.
Метаботропный
При присоединении медиатора, и возбуждении метаботропного рецептора изменяется внутриклеточный метаболизм, т.е. течение биохимических реакций
С внутренней стороны мембраны к такому рецептору присоединен целый ряд других белков, выполняющих ферментативные и частью передающие («посреднические») функции (рис.). Белки-посредники относятся к G-белкам. Под влиянием возбужденного рецептора G-белок воздействует на белок-фермент, обычно переводя его в «рабочее» состояние. В результате запускается химическая реакция: молекула-предшественник превращается в сигнальную молекулу - вторичный посредник.
Рис. Схема строения и функционирования метаботропного рецептора: 1 - медиатор; 2 - рецептор; 3 - ионный канал; 4 - вторичный посредник; 5 - фермент; 6 - G-белок; → - направление передачи сигнала
Вторичные посредники - это мелкие, способные к быстрому перемещению молекулы или ионы, передающие сигнал внутри клетки. Этим они отличаются от «первичных посредников» - медиаторов и гормонов, передающих информацию от клетки к клетке.
Наиболее известным вторичным посредником является цАМФ (циклическая аденозинмонофосфорная кислота), образуемая из АТФ с помощью фермента аденилатциклазы. Похожа на него цГМФ (гуанозинмонофосфорная кислота). Другими важнейшими вторичными посредниками являются инозитолтрифосфат и диацилглицерол, образуемые из компонентов клеточной мембраны под действием фермента фосфолипазы С. Чрезвычайно велика роль Ca 2+ , входящего в клетку снаружи через ионные каналы или высвобождающегося из особых мест хранения внутри клетки («депо» кальция). В последнее время много внимания уделяется вторичному посреднику NO (оксиду азота), который способен передавать сигнал не только внутри клетки, но и между клетками, легко преодолевая мембрану, в том числе от постсинаптического нейрона к пресинаптическому.
Заключительный шаг в проведении химического сигнала - воздействие вторичного посредника на хемочувствительный ионный канал. Это воздействие протекает либо непосредственно, либо через дополнительные промежуточные звенья (ферменты). В любом случае происходит открытие ионного канала и развитие ВПСП либо ТПСП. Продолжительность и амплитуда их первой фазы будет определяться количеством вторичного посредника, которое зависит от количества выделившегося медиатора и длительности его взаимодействия с рецептором.
Таким образом, механизм передачи нервного стимула, используемый метаботропными рецепторами, включает в себя несколько последовательных этапов. На каждом из них возможна регуляция (ослабление либо усиление) сигнала, что делает реакцию постсинаптической клетки более гибкой и адаптированной к текущим условиям. Вместе с тем это же приводит к замедлению процесса передачи информации
Система цАМФ
Фосфолипаза С
Методика подсчета лейкоцитов в крови.
4. Методика определения количества гемоглобина в крови.
5.
Определение цветного показателя крови. Абсолютное содержание гемоглобина в эритроцитах.
6. Методика определения скорости оседания эритроцитов (СОЭ).
7. Методика определения групп крови.
Определения свертывания крови по Сухареву.
Необходимо для работы: испытуемый, чистый и сухой капилляр от прибора Панченкова, стерильный скарификатор и пинцет, спирт, йод, вата.
Проведение работы:
1. Проколоть палец, снять первую каплю крови сухой ваткой.
2. Погрузить конец капилляра в каплю крови, не прижимая отверстия к пальцу.
3. Слегка опустив наружный конец капилляра, набрать 20-30 мм крови и перевести этот столбик крови на середину.
4. Держа капилляр двумя пальцами, произвести плавное покачивание его в обе стороны с амплитудой 40-45 0 .
Свободное смещение столбика крови говорит о том, что свертывание еще не наступило. Замедленное движение крови при наклоне капилляра характеризует начало свертывания, при этом на внутренней стенке капилляра появляются небольшие сгустки.
Момент полной остановки движения столбика крови в капилляре соответствует наступлению окончательного свертывания крови. По предлагаемой методике скорость свертывания крови в норме: начало свертывания происходи через 30 с - 2 мин., полное свертывание - через 3-5 мин.
9. Методика определения осмотической резистентности эритроцитов.
Цель работы: ознакомиться со свойствами осмотической устойчивости эритроцитов и произвести количественную оценку их резистентности по отношению к гипотоническим растворам.
Необходимо для работы: восемь чистых и сухих пробирок, штатив, мерный цилиндр на 5-10 мл, 1%-ный раствор хлористого натрия, дистиллированная вода, стерильные скарификаторы и пинцет, спирт, йод, вата, стеклянные палочки, мерные пипетки.
Проведение работы:
1. В каждую из пробирок налить 1%-ный раствор хлористого натрия в убывающем количестве от 0,6 до 0,15 мл, затем в каждую пробирку добавить дистиллированной воды до 1 мл. Пробирки пронумеровать.
2. Во все пробирки добавить с помощью капилляра Сали по капле крови. Добавление крови лучше начинать с пробирки, в которую помещен раствор с наименьшей концентрацией, и идти в сторону увеличения. Осторожно перемешать содержимое, чтобы не образовались пузырьки воздуха.
3. Оставить пробирки в штативе на хорошо освещенном месте на 30-40 мин, после чего рассмотреть их содержимое (не взбалтывать !). Проанализировать результаты.
4. О границах (уровне) осмотической резистентности эритроцитов судить по степени гемолиза крови в различных гипотонических растворах.
6. Отметить пробирки, в которых:
· отсутствует гемолиз;
· частичный гемолиз;
· полный гемолиз.
7. В выводах дать определение верхней и нижней границ резистентности эритроцитов и сделать заключение о соответствии полученных результатов физиологической норме.
Камера Горяева – это приспособление для измерения числа клеток и частиц в определённом объёме жидкости (кровь, моча), состоящее из специального толстого предметного и покровного стёкла.
Предметное стекло имеет углубленную площадку посередине, на которую нанесена сетка из 225 больших квадратов. Из этих квадратов 25 равномерно разделены на 16 меньших квадратов. Благодаря такому объёму сетки подсчёт выполняется точнее, нежели в других ручных счётных устройствах.
Камера ГоряеваОбслуживание камеры
После использования инструмента предметное стекло дезинфицируют путём погружения в 4% раствор формалина на час или в 70% раствор этилового спирта на полчаса. После этого камеру тщательно промывают дистиллированной водой. Излишек жидкости убирают мягкой салфеткой. Стоит обратить внимание на то, что камеру нельзя протирать ватным тампоном из-за цепляющихся к ней волокон. Хранится стекло в сухом месте.
Правило Егорова
Во время использования камеры в подсчитываются те ФЭ, которые располагаются внутри квадрата сетки и на верхней и левой линии его периметра. При этом частицы, касающиеся правой и нижней линии периметра во время расчёта данной клетки не включаются.
Определение лейкоцитов в крови
Методика подсчёта лейкоцитов
Подсчёт количества лейкоцитов начинается с разведения крови в 3-5% растворе этановой кислоты с метиловой синью в 20 раз. Рабочий материал перед применением протирают марлей насухо.
Покровное стекло нужно протереть до возникновения цветных колец Ньютона. Далее, камеру заполняют разведённой кровью, при этом первые две капли выпускают на фильтровальную бумагу. Жидкость попадает в камеру благодаря капиллярному свойству воды. Важно проследить, чтобы в желобки при заполнении ничего не затекало. Если это произошло, жидкость аккуратно убирают фильтровальной бумагой. Затем оставляют сетку в покое на минуту, ожидая, пока ФЭ остановят своё движение.
Подсчёт лейкоцитов осуществляется в пределах ста больших квадратов при малом увеличении, то есть при окуляре 10х и объективе 8х, по правилу Егорова. Полученная цифра используется в формуле.
Х = (n × 250 × 20) / 100 или Х = n × 50
Х – количество лейкоцитов.
n – число, полученное в результате подсчёта в камере.
Количество лейкоцитов определяют, принимая во внимание число больших квадратов сетки – 100 и разведение крови – 20.
Как происходит подсчет лейкоцитов Норма лейкоцитов и отклонения
Норма лейкоцитов у людей составляет 4,0 – 9,0 × 10⁹/л. Или, по-другому, в 1 кубическом мм крови располагается примерно 6000 белых кровяных клеток.
На отклонения от нормы могут влиять внешние физиологические факторы:
- приём пищи перед сдачей крови;
- стресс;
- беременность или менструация у женщин;
- переохлаждение или перегрев;
Если количество белых кровяных клеток превышает 9,0 × 10⁹/л (повышены лейкоциты), такое состояние называется лейкоцитозом. Подобную картину можно увидеть при злокачественных заболеваниях крови, инфекциях, поражениях радиацией и отравлениях.
Лекарственные препараты тоже способны увеличить количество лейкоцитов. Некроз тканей, обильные кровотечения, в том числе в результате операций, почечная кома, болезни сердца – всё это может привести лейкоцитозу.
Падение количества лейкоцитов ниже 3,9 × 10⁹/л называется лейкопенией. Однако у некоторых людей фиксируется постоянное число лейкоцитов в количестве 3,5 × 10⁹/л. Принято считать, что у таких людей сохраняется резерв этих клеток в тканях в 50 раз больше, нежели в крови. Еще встречается функциональная лейкопения после введения анальгетиков, сульфаниламидов и других лекарственных препаратов, после долгой мышечной работы, в результате поражения инфекциями и вирусами (тиф, грипп, корь).
Лейкоцитарная формула
Все виды лейкоцитов составляют лейкоцитарную формулу. По ней можно выявить определённые патологии. Нормы формулы меняются в зависимости от возраста и периода жизни человека. Сдвиг хорошо заметен у женщин во время беременности или после родов.
Применяются разные способы подсчёта соотношения видов этих клеток, но все они связаны с тем, что более тяжелые клетки (базофилы, например) располагаются ближе к краю мазка, а лимфоциты, как легкие клетки, остаются в середине.
- Метод Филипченко. В данном способе подсчёт осуществляется по поперечной прямой границы одного конца к другому. Мазок при этом мысленно разделяют на три части.
- Метод Шиллинга. Лейкоциты подсчитывают в четырех участках мазка.
Полученные данные записываются в таблицу. Индивидуально количество каждого вида белых клеток крови высчитывается по формулам. Отмечаются те элементы, которые попали в поле зрения. Счёт ведётся до того, момента, пока сумма всех подсчитанных клеток не составит 100.
Методика подсчёта лейкоцитов в моче
В моче подсчитывается количество лейкоцитов в камере Горяева по Нечипоренко. Этот анализ нужен для мониторинга заболеваний почек. Периодическое исследование мочи помогает проследить за правильностью лечения и эффективностью назначенной терапии.
Сбор мочи
В изучение идёт только первая утренняя моча в середине мочеиспускания. Для пациента важно следовать основным правилам сбора этого биоматериала. Специальной дополнительной подготовки для исследования не требуется.
Методика расчета
10 мл свежесобранной мочи центрифугируют в течение трёх минут при 2,5 тыс. оборотов в минуту. Перед этим необходимо проследить, чтобы моча, во избежание частичного распада клеток, имела слабокислую реакцию.
При помощи пипетки с узким оттянутым концом убирают верхний слой. В пробирке оставляют от 0,5 мл мочи до 1 мл в зависимости от объёма осадка.
Осадок аккуратно перемешивают с надосадочной жидкостью. Полученным раствором заполняют счётную камеру Горяева по схожему принципу, что используется при подсчёте ФЭ крови. Камеру оставляют в покое от 3 до 5 минут.
Полученная цифра используется в формуле:
Х = (а/0,9) × (1000/V)
Х – число лейкоцитов в 1 мл мочи.
а – подсчитанное количество, делённое на объём камеры в 1 мкл осадка мочи.
v – Количество мочи, взятой для исследования.
1000 – количество осадка.
Это важно! Норма лейкоцитов: в 1 мл мочи не более 2 × 10³ белых кровяных клеток.
Еще:
Разновидности лейкоцитов в крови, в чем их важность для человека?
Кровь человека имеет красный цвет, потому что основными ее элементами являются клетки-эритроциты. Их яркая окраска и «задает тон» жидкости, текущей по нашим сосудам. Однако приблизительно на тысячу эритроцитов в крови приходится одна клетка под названием лейкоцит.
Лейкоцитов (белых кровяных шариков, белых кровяных телец) гораздо меньше, чем эритроцитов, однако их значение для нас огромно. Лейкоциты - это основа иммунитета человека , базис для поддержания защитных сил организма, инструмент борьбы со всевозможными «вредителями», которые стремятся нас атаковать и подорвать наше здоровье. Несмотря на большой количественный перевес в пользу эритроцитов, лейкоциты очень важны, весьма многочисленны и крайне разнообразны: как в том, что касается их внешнего вида, так и в плане функций.
Происхождение белых кровяных телец:
Лейкоциты у детей и взрослых обнаруживаются и изучаются главным образом в крови, однако образуются они за ее пределами - в особом органе. Он довольно внушителен по размеру и массе (весит порядка 2,5 кг), и его особенность состоит в том, что он рассредоточен по всему телу.
Речь идет о красном костном мозге , который находится внутри трубчатых и губчатых костей тела человека . Там-то и происходит выработка элементов крови. Все лейкоциты происходят из единой стволовой клетки. Она делится, давая несколько клеточных ростков, ее потомки развиваются, созревают, переходят в кровь и в итоге уже в зрелом состоянии приступают к реализации своих функций.
Виды и норма содержания лейкоцитов:
Лейкоциты в крови имеют размер всего несколько микрометров, и их, конечно же, не видно невооруженным глазом. Однако когда мазок крови изучают под микроскопом, становится очевидно, что белые кровяные клетки действительно существуют и очень сильно между собой различаются.
Вообще, если проследить путь от стволовой клетки до зрелых лейкоцитов, то можно насчитать несколько десятков форм клеток разного «возраста». Однако мы рассмотрим лишь те разновидности, которые представляют наибольший интерес для врачей - зрелые клетки. Их пять видов.
Базофилы - лейкоциты с S-образным ядром, которые окрашиваются стандартными красителями в голубой цвет. Принимают участие в развитии аллергических реакций . Среди всех лейкоцитов, коих в крови содержится 3-9 × 109/л, базофилы занимают долю 0,5-1,5%.
Эозинофилы чуть более многочисленны. Они воспринимают кислые красители, поэтому в мазке крови , окрашенном обычным образом, они видны в розово-оранжевом цвете. Внутри них имеется видимая под большим увеличением зернистость. Эозинофилов в крови 1-4%, и они тоже участвуют в осуществлении механизма аллергии.
Моноциты - клетки с большим бобовидным ядром фиолетового цвета, внутри них находится зернистость. Они способны к образованию выростов цитоплазмы - «ложноножек», при помощи которых эти лейкоциты в крови могут передвигаться. Количество моноцитов составляет 4-8% от всех видов белых кровяных телец.
Лимфоциты - мелкие клетки с округлым ядром и без зернистости в цитоплазме. Несмотря на свои не очень впечатляющие размеры, лимфоциты выполняют множество функций и являются главными в осуществлении клеточного и гуморального иммунитета . Число их достаточно велико - 20-40%.
Нейтрофилы - наиболее многочисленная (до 80%) разновидность белых кровяных шариков. У них голубая цитоплазма с розовой зернистостью и большое фиолетовое ядро, иногда разделенное на сегменты.
Значение лейкоцитов:
Достаточно сложно описывать роль клеток, разные виды которых исполняют многочисленные и многообразные задачи в организме. Тем не менее, любая из функций иммунной системы осуществляется благодаря той или иной форме лейкоцитов. Если вкратце обрисовать значение каждой разновидности этих клеток, то представить их функции можно так.
Базофилы. Накапливают биологически активные вещества: серотонин, гистамин и т.д. Эти вещества являются химическими сигнализаторами, при их помощи базофилы могут подавать другим клеткам знаки о том, что в организм проникли вредоносные частицы. При столкновении с агрессором базофил выбрасывает эти соединения в кровь, что ведет к воспалению и развитию аллергической реакции, которые направлены на изгнание «врага» из организма.
Эозинофилы . Они тоже играют важную роль в аллергическом процессе, но эта роль несколько иная, чем у базофилов. Эозинофилы не вызывают аллергию, а борются с ней. Их задача состоит в связывании чужеродных частиц, проникших в тело человека.
Нейтрофилы - самые быстро реагирующие клетки иммунитета . Стоит в организм попасть агрессору, и они тут же перемещаются к нему, поглощают его и переваривают. Это явление называется фагоцитозом . К сожалению, победив несколько «врагов», нейтрофилы и сами погибают. Так что можно сказать, что они жертвуют собой в интересах благополучия организма.
Моноциты - тоже клетки со способностью к фагоцитозу . 
Когда в кровь проникает бактерия, грибок или другой вредный объект, моноцит подходит к нему, «пожирает» и разрушает. Но, в отличие от нейтрофилов, эти лейкоциты в крови продолжают свое существование и после победы над «врагами». Они подходят к лимфоцитам и передают им информацию о том, с какими агрессорами столкнулись. Также они обучают лимфоциты действиям, которые те должны предпринимать при проникновении в организм вредных частиц.
Лимфоциты - самые многофункциональные компоненты иммунитета . Они координируют работу других лейкоцитов, непосредственно уничтожают больные и поврежденные клетки организма, а также выделяют защитные антитела против различных агрессоров.
Значение лейкоцитов у детей и взрослых сложно переоценить: без них мы были бы беззащитны перед болезнями. Поэтому хорошее состояние иммунной системы надо поддерживать. Ведение здорового образа жизни, лечение существующих заболеваний очень этому способствуют. Кроме того, важно давать иммунитету «подпитку» в виде иммуномодулирующих препаратов. Для этого можно посоветовать прием препарата Трансфер Фактор - натурального средства на основе информационных молекул , помогающего укрепить иммунитет и нормализовать его работу.
Определенного фиксированного количества лейкоцитов, которое считалось бы нормой для всех людей, нет. Эта цифра меняется в зависимости от возраста человека: чем старше человек, тем меньше становится количество лейкоцитов в его крови. Нормальным количеством лейкоцитов считается 9-30х109/л. У эта цифра в три раза меньше - 4-9х109/л. Показатель количества данных частиц в крови может немного отклонятся от нормы в зависимости от функционального состояния организма и даже времени суток.
Очень важно следить в период беременности за уровнем содержания лейкоцитов в моче. Высокие показатели говорят о наличии в организме женщины, вынашивающей ребенка, воспалительных процессов, к примеру, пиелонефрита или цистита.
Не стоит забывать, что конечный результат анализа зависит от его правильного проведения. Поэтому врачи, прежде чем назначать какие-либо сильнодействующие препараты беременной женщине, проводят повторный анализ.
Для считывания количества лейкоцитов в крови, спермограмме или моче проводится следующая процедура. Определенную порцию жидкости размещают в аппарат – центрифугу. Полученный осадок наносят на стекло и рассматривают под микроскопом. Для подсчета количества лейкоцитов осадок окрашивают с помощью специального красителя. После чего подсчитывается видимое количество лейкоцитов в поле зрения.
Если анализ показал отклонение от нормального уровня содержания лейкоцитов, необходимо выяснить причину повышения количества частиц. Некоторые болезни диагностируются с помощью проверки уровня содержания лейкоцитов.
Факторы, влияющие на правильность исследования лейкоцитов
Криоглобулинемия
Парапротеинемия
Нормобласты
Агрегаты тромбоцитов
Нелизированные эритроциты
Длительное хранение крови при комнатной температуре
Возраст Количество лейкоцитов
1 день 11.6 - 22.0
1 неделя 8.1.- 14.3
1 месяц 7.6 - 12.4
1 год 6.8 - 11.0
Взрослые 4.0 - 9.0
Методы определения количества лейкоцитов в крови .
- Подсчет количества лейкоцитов в счетной камере
- Подсчет лейкоцитов в гематологических анализаторах
Определение количества лейкоцитов в счетной камере.
Подсчет лейкоцитов под микроскопом проводят после лизирования эритроцитов в 100 больших квадратах счетной сетки и пересчитывают на 1 л крови, исходя из объема квадратов и разведения крови. Подсчет лейкоцитов должен быть произведен в течение 2-4 ч после взятия крови.
- При наличии в периферической крови ядросодержащих клеток красного ряд, они не лизируются и подсчитываются вместе с лейкоцитами. В этом случае, чтобы определить истинное количество лейкоцитов, из общего числа посчитанных клеток вычитают количество клеток красного ряда.
- Например: Общее количество лейкоцитов при подсчете в камере (или на анализаторе) -45х109/л. При подсчете лейкоцитарной формулы найдено, что на 100 лейкоцитов присутствует 50 эритробластов (нормобластов).
Рассчитываем истинное количество лейкоцитов в крови:
150 клеток - 45 х 109/л
100 клеток (лейкоциты) - X
Х =100*45*10/л /150 = 30*10/л
Таким образом, истинное число лейкоцитов в крови составляет 30 х109/л.
Основные источники ошибок при подсчете лейкоцитов в камере:
Неправильное соотношение объемов крови и уксусной кислоты, взятых в пробирку.
Неправильно подготовленный раствор уксусной кислоты (при концентрации большей, чем 5%, часть лейкоцитов может лизироваться, что приведет к занижению результата).
Длительное нахождение пробы при температуре выше 28°С, что может ускорить лизис лейкоцитов в образце и привести к занижению результата.
Неправильное заполнение камеры Горяева. Как и при подсчете эритроцитов, камеру необходимо оставлять на 1 минуту для оседания клеток.
Недостаточно хорошо отмытая после предыдущего определения камера Горяева. Оставшиеся в камере лейкоциты могут завышать результаты анализа.
Методы подсчета тромбоцитов
В счетной камере
Мазках крови
Гематологическом анализаторе
Каждая группа методов имеет преимущества и недостатки.
Подсчет тромбоцитов в камере достаточно точен, не требует для расчета количества эритроцитов. С другой стороны этот метод более трудоемкий, поскольку тромбоциты в нативном виде представлены мелкими и плохо контрастированными элементами. Недостаток метода - подсчет тромбоцитов в ближайшие часы после взятия крови.
Определение количества тромбоцитов в мазках крови значительно уступает по своей точности камерному методу или автоматическим счетчикам. Ошибки при подсчете в мазках крови могут быть обусловлены плохим качеством мазка и связанным с этим неравномерным распределением тромбоцитов, неточным определением количества эритроцитов крови. Существенное неудобство метода - необходимость одновременного подсчета тромбоцитов и эритроцитов в крови. Преимущество его - возможность исследования тромбоцитов в любое время, независимо от момента взятия крови.
Метод определения тромбоцитов с помощью гематологического анализатора позволяет достаточно точно определить количество тромбоцитов, их средний объем и распределение по объему.
