Examen du contenu gastrique. Acidité gastrique

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Débit d'acide chlorhydrique

la quantité d'acide chlorhydrique sécrétée par les glandes de l'estomac par unité de temps (généralement 1 heure).


1. Petite encyclopédie médicale. - M. : Encyclopédie médicale. 1991-96 2. Premiers secours. - M. : Grande Encyclopédie russe. 1994 3. Dictionnaire encyclopédique des termes médicaux. - M. : Encyclopédie soviétique. - 1982-1984.

Voyez ce qu’est le « débit d’acide chlorhydrique » dans d’autres dictionnaires :

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Contenu gastrique et duodénal.

Etude des principaux indicateurs du suc gastrique

Le suc gastrique est un produit de l'activité exocrine et excrétrice des glandes gastriques ; il possède un complexe inorganique (eau, acide chlorhydrique, chlorures, sulfates, phosphates, bicarbonates, ammoniaque, sodium, potassium, calcium, magnésium, hydrogène) et organique ( représenté par des substances de nature protéique et non protéique), se distinguant des autres sécrétions digestives par sa réaction acide prononcée, les caractéristiques des enzymes et des composés de haut poids moléculaire. Son volume et sa composition varient en fonction du rapport des facteurs nerveux et humoraux, du type et de la force du stimulus, des caractéristiques de l'espèce et de l'âge, ainsi que de la pression dans la cavité gastrique.

Une personne sécrète environ 2 à 2,5 litres de jus par jour - un liquide incolore (densité relative de 1,002 à 1,007) et inodore. Sa couleur et ses propriétés varient selon la présence de salive, de bile, de sang, de sucs pancréatiques et intestinaux. Avec une faible acidité et une évacuation altérée, il peut acquérir une odeur due aux restes d'aliments fermentés. Le suc gastrique possède des propriétés bactéricides et bactériostatiques prononcées, à l'origine desquelles l'acide chlorhydrique (HCl) joue un rôle primordial. La dépendance du degré d'activité bactéricide du jus neutre ou légèrement alcalin sur l'intensité de la leucopédie gastrique diffère également. Le principal processus enzymatique dans la cavité gastrique est l’hydrolyse initiale des protéines. Dans la pratique clinique, des études diagnostiques en laboratoire du contenu gastrique sont le plus souvent effectuées pour déterminer : des indicateurs de sécrétion acide et d'activité enzymatique ; indicateurs de cytoprotection ; flore microbienne de l'estomac.

Méthodes d'intubation gastrique

Les méthodes d'études fonctionnelles de la sécrétion gastrique peuvent être divisées en deux groupes :
1. Sondes :
aspiration, fractionnée;
perfusion intragastrique;
titration intragastrique ;
pH-métrie intragastrique.
2. Sans sonde :
test au bleu de méthylène (test Sali) ;
recherche utilisant des résines échangeuses d'ions;
acidotest;
détermination de l'uropepsine;
méthode de radiotélémétrie ;
détermination de la sécrétion à l'aide de l'indicateur rouge Congo ;
tester avec Azure A ;
dosage des pepsinogènes sériques du groupe I.

Les méthodes sans sonde sont désormais rarement utilisées, car il existe des méthodes plus informatives, sûres et simples, telles que l'aspiration, la stimulation fractionnée avec pentagastrine et la pH-métrie intragastrique. Les études sur la fonction de production d'acide de l'estomac en clinique sont devenues possibles après la proposition de sonder l'estomac avec une sonde spéciale et des stimulants pour la sécrétion d'acide chlorhydrique. Dans un premier temps, des petits-déjeuners d'essai entéraux étaient proposés : bouillon de viande ; jus de chou; solution de caféine.

Cependant, les résultats obtenus par les différents chercheurs variaient considérablement les uns des autres, ce qui a finalement contraint l'abandon de ces petits-déjeuners d'essai. L'effet stimulant de l'histamine sur la fonction sécrétoire de l'estomac a été découvert. Actuellement, le test d'histamine sous-maximal (0,008 mg/kg de chlorhydrate d'histamine par voie sous-cutanée) et le test d'histamine maximal, plus informatif (0,025 mg/kg de chlorhydrate d'histamine par voie sous-cutanée), sont largement utilisés dans la pratique clinique. L'inconvénient de l'histamine est la possibilité d'effets secondaires (réactions vasculaires). La réaction de sécrétion maximale de l'estomac est également observée avec l'administration sous-cutanée de 6 µg/kg du tétrapeptide C-terminal gastrine-pentagastrine, qui ne provoque pratiquement aucun effet indésirable.

Méthode fractionnée d'aspiration de sondage gastrique. La recherche par aspiration fractionnée de la sécrétion gastrique est actuellement réalisée presque de la même manière dans tous les laboratoires cliniques et se concentre sur l'indicateur intégral - la production d'acide chlorhydrique par unité de temps, en tenant compte du volume de sécrétion.

Le principe de la détection. Obtention d'une sécrétion gastrique pure par aspiration active à différentes étapes de l'activité sécrétoire de l'estomac. Équipement:
Sonde fine (tube en caoutchouc creux d'un diamètre de 4 à 5 mm, d'une longueur d'environ 1,5 m avec des repères à une distance de 50 à 55 cm et de 70 à 75 cm de l'extrémité borgne de la sonde).
Des tubes à essai.
Supports pour tubes à essai.
Plateau.
Entonnoir.
Une seringue d'une capacité de 20 ml, ou une pompe à jet d'eau standard, ou une aspiration sous vide.
Un des stimulants actifs de la sécrétion gastrique.

Sonder les progrès. Il est préférable d'effectuer le sondage dans une pièce spéciale. Avant d'étudier la fonction sécrétoire de l'estomac, il est nécessaire d'arrêter le traitement médicamenteux au moins 24 heures avant l'étude et de l'effectuer généralement le matin après un jeûne de 14 heures. L'extrémité d'une fine sonde est placée dans les profondeurs du pharynx à la racine de la langue et plusieurs mouvements de déglutition tranquilles sont suggérés, grâce auxquels la sonde se déplace le long de l'œsophage. L'insertion de la sonde jusqu'au premier repère indique que son extrémité interne se trouve dans le fond de l'estomac, et l'avancement de la sonde jusqu'au deuxième repère indique qu'elle a atteint le pylore de l'estomac. Une condition nécessaire à l’extraction complète du contenu gastrique est l’insertion d’une sonde à une profondeur calculée comme suit : la taille du patient en centimètres moins 100.

Après insertion de la sonde, le contenu de l'estomac est entièrement retiré à jeun, ce qui constitue une partie distincte pour la recherche. Ensuite, en une heure, les sécrétions gastriques sont collectées, libérées sous l'influence stimulante de la sonde et de l'aspiration - sécrétion basale (débit d'acide basal, ou BAO). Ensuite, ils commencent la stimulation active de la muqueuse gastrique en introduisant un stimulant entéral ou parentéral, après quoi le suc gastrique est également collecté en une heure - sécrétion stimulée ou maximale (débit acide maximal ou MAO). L'aspiration du suc basal et stimulé est réalisée toutes les 15 minutes de la première et de la deuxième heure de sondage. Ainsi, pour chaque heure, on obtient 4 portions de suc gastrique, qui constituent ce qu'on appelle la tension horaire de la période correspondante de sécrétion gastrique. Les portions de suc gastrique résultantes sont soumises à des recherches physiques et chimiques. Au total, 9 portions sont examinées : une portion reçue à jeun, puis 4 portions toutes les 15 minutes de la première heure de sondage et 4 portions pendant la deuxième heure de sondage.

Examen du contenu gastrique

L'étude du suc gastrique comprend la détermination des propriétés physiques, un examen chimique et microscopique.

Propriétés physiques. Quantité. Chaque portion de suc gastrique est mesurée et son volume est calculé dans toutes les phases du cycle de sécrétion. Le volume de jus à jeun ne doit pas dépasser 50 ml, dans des conditions de sécrétion basale, le volume de jus par heure peut être de 50 à 100 ml, dans la phase de sécrétion stimulée en réponse à un stimulus alimentaire - 50 à 110 ml, en réponse à une stimulation sous-maximale avec de l'histamine 100 à 140 ml. Selon Kay, le volume horaire de suc gastrique en réponse à une stimulation utilisant des doses maximales d'histamine est de 180 à 220 ml.

Odeur. Le contenu gastrique normal n’a aucune odeur ou est légèrement acide. Avec une diminution de la teneur en acide chlorhydrique ou son absence totale, le contenu gastrique acquiert une odeur particulière d'acide butyrique, lactique ou acétique en raison des produits de fermentation résultants. Si des processus de putréfaction se développent dans l'estomac en raison de la dégradation des protéines ou de la désintégration d'une tumeur cancéreuse, le suc gastrique acquiert une odeur putride. Une odeur putride peut également indiquer une violation de l'évacuation gastrique.

Couleur. Le contenu gastrique normal est incolore. En présence de bile dans l'achyle, elle a une couleur jaune, en présence d'acide chlorhydrique elle est verte du fait que dans un environnement acide, la bilirubine de la bile est oxydée en biliverdine. La couleur du contenu gastrique change également en présence de sang. Sous l’influence de l’acide chlorhydrique, l’hémoglobine du sang se transforme en hématine acide chlorhydrique, conférant au contenu gastrique une couleur brune plus ou moins intense. S'il n'y a pas d'acide chlorhydrique dans le contenu gastrique, sa couleur lorsqu'il est mélangé au sang est rouge. L'intensité de la couleur dépend du degré de saignement.

Vase. Normalement présent dans le suc gastrique en petites quantités. Une augmentation de la teneur en mucus est observée avec la gastrite et d'autres lésions de la muqueuse gastrique. Le mucus flottant à la surface du suc gastrique est de la salive, des crachats ou le contenu de la partie nasale du pharynx ; il est saturé d'air, de lumière, sous forme de flocons et de grumeaux grossiers, et n'a aucune valeur diagnostique.

Impuretés. Les restes de masses alimentaires pouvant être détectés indiquent une violation de l'évacuation de l'estomac.

Recherche chimique. L'examen chimique du contenu gastrique permet de mieux comprendre les fonctions acides, enzymatiques, protéiniques et autres de l'estomac.

Etude de la fonction acidogène de l'estomac. L'acidité totale du suc gastrique se compose de trois valences acides : l'acide chlorhydrique libre (dissocié), l'acide chlorhydrique lié et un résidu acide. L'acidité libre, la concentration en ions hydrogène [H+], doit être comprise comme la concentration d'acide chlorhydrique libre et complètement dissocié.

L'acidité liée doit être comprise comme la concentration d'ions hydrogène liés par des groupes carboxyles de protéines et de peptides. Le résidu acide contient des acides organiques (butyrique, lactique, acétique) et des phosphates réagissant avec les acides. Le moyen le plus courant de mesurer l'acidité du suc gastrique est de le titrer avec un alcali fort (solution de NaOH 0,1 N) en présence d'indicateurs qui changent de couleur en fonction du pH du milieu.

Pour déterminer l'acidité totale du suc gastrique, on utilise l'indicateur phénolphtaléine, qui reste incolore dans un environnement acide et devient rose dans un environnement alcalin, à un pH de 8,2 à 10,0. L'indicateur orange diméthylaminoazobenzène devient rouge en présence d'acide chlorhydrique libre à un pH de 2,4 à 4,0 et en son absence, il devient orange ou jaune. L'indicateur acide alizarine sulfonique sodique, qui a une couleur cerise, devient jaune dans un environnement acide et violet dans la zone de pH de 4,3 à 6,3. En présence de cet indicateur, l'acide chlorhydrique libre et le résidu acide du contenu gastrique sont titrés.

Si l'indicateur diméthylaminoazobenzène vire au rouge lorsqu'il est ajouté au suc gastrique, la méthode Michaelis est utilisée pour le titrage. Si le diméthylaminoazobenzène vire au jaune, le suc gastrique doit être titré selon la méthode Tepffer. Lors de la détermination de l'acidité du suc gastrique par des méthodes de titrage, vous devez surveiller strictement le changement de couleur dans les coupelles et noter avec précision le niveau d'alcali dans la burette.

Méthode Michaelis. Réactifs : solution alcoolique à 1 % de phénolphtaléine, solution alcoolique à 0,5 % de diméthylaminoazobenzène, solution d'hydroxyde de sodium 0,1 N.

Ustensiles et équipements. Burettes d'une capacité de 25, 50 ou 100 ml, support Bunsen, béchers d'une capacité de 50 ml, entonnoirs, pipettes graduées d'une capacité de 5 ml ou 10 ml.

Avancement de l'étude. Mesurez 5 ml de suc gastrique filtré sur 2 couches de gaze dans un bécher, puis ajoutez 1 à 3 gouttes de solution de diméthylaminoazobenzène et 1 à 2 gouttes de solution de phénolphtaléine. Titrer 0,1 N. solution d'hydroxyde de sodium sous agitation constante. Noter au préalable le niveau de solution de soude 0,1 N dans la burette (niveau I).

Les quantités suivantes sont déterminées :
la quantité d'alcali utilisée pour titrer le suc gastrique de la couleur rouge initiale à l'orange (niveau II) ;
la quantité d'alcali utilisée pour le titrage de l'orange au jaune citron (niveau III) ;
la quantité d'alcali dépensée pour le titrage du rouge au rose persistant (niveau IV).

Calcul. La quantité d'alcali utilisée pour le titrage jusqu'au premier changement de couleur (la différence entre les niveaux II et I) détermine la concentration de HCl libre dans le suc gastrique. La quantité d'alcali utilisée pour l'ensemble du titrage, depuis la couleur rouge du diméthylaminoazobenzène en milieu fortement acide jusqu'à la couleur rouge de la phénolphtaléine en milieu alcalin, c'est-à-dire la différence entre les niveaux IV et I, correspond à l'acidité totale. La quantité d'alcali utilisée pour le titrage à un niveau qui représente la moyenne arithmétique entre les niveaux III et IV correspond à la concentration de HCl total (c'est-à-dire la somme de HCl libre et lié), et la concentration de HCl lié est trouvée par la différence entre HCl total et HCl libre. La différence entre l’acidité totale et le HCl total est appelée résidu acide. Ainsi, toutes les substances réagissant avec les acides sont dosées en une seule portion.

Exemple de calcul. Niveau I dans la burette - 4, niveau II - 5,4 (couleur jaune-orange), niveau III - 6 (couleur jaune citron), niveau IV - 6,8 (rose persistant). La moyenne arithmétique entre les niveaux III et IV est de 6,4. Pour le titrage, 5 ml de suc gastrique ont été prélevés, le calcul est effectué pour 100 ml, donc la quantité d'alcali dépensée aux différentes étapes du titrage est multipliée par 20 (si 10 ml de suc gastrique sont titrés, puis multipliée par 10 en conséquence ).

HCl libre : 5,4–4=1,4x20=28
Acidité totale : 6,8–4=2,8x20=56
Somme de HCl libre et lié : 6,4–4=2x20=48
HCl lié : 48–28=20
Résidu acide : 56–48=8

Détermination unifiée de l'acidité par la méthode Tepffer. Réactifs :
Solution alcoolique à 1% de phénolphtaléine. Intervalle de transition de couleur à pH 8,2–10,0.
Solution alcoolique à 0,5% de diméthylaminoazobenzène. Intervalle de transition de couleur à pH 2,9–4,0.
Solution aqueuse à 1% d'acide alizarine sulfonique sodique. Intervalle de transition de couleur à pH 4,3–6,3.
Solution d'hydroxyde de sodium 0,1 N.

Avancement de l'étude. Mesurez 5 ml de suc gastrique filtré dans 2 verres. Ajoutez 2 gouttes de diméthylaminoazobenzène et de phénolphtaléine à la première portion et déterminez la concentration de HCl libre et l'acidité totale. Une goutte d’acide alizarine sulfonique sodique est ajoutée à la deuxième portion de suc gastrique et titrée jusqu’à ce que la couleur jaune vire au violet pâle. Dans la zone de transition de cet indicateur, les substances réagissant avec les acides sont neutralisées, à l'exception du HCl lié, qui se retrouve par la différence entre le volume d'alcali utilisé pour neutraliser toutes les valences acides du suc gastrique (titrage avec de la phénolphtaléine) et le volume utilisé pour titrage avec de l'acide alizarine sulfonique sodique. Toutes les valeurs obtenues sont multipliées par 20 pour recalculer pour 100 ml de suc gastrique.

Dans les cas où le volume de suc gastrique obtenu est faible, une méthode microchimique est utilisée pour déterminer l'acidité. Équipement. Microburette. Les réactifs sont les mêmes que pour la méthode Michaelis.

Avancement de l'étude. Placer 1 ml de jus filtré et 5 ml d'eau distillée dans un bécher de titrage. En titrant à l'aide d'une microburette, déterminez la concentration de HCl libre et l'acidité totale à l'aide de la méthode Michaelis.

Calcul. La teneur en HCl libre est égale à la quantité d'alcali utilisée pour le titrage jusqu'à la couleur jaune-orange (couleur saumon) du diméthylaminoazobenzène, multipliée par 100. L'acidité totale correspond à la quantité d'alcali utilisée pour l'ensemble du titrage, réduite de 0,05. (correction de l'indicateur) et multiplié par 100. À faible acidité, la correction de l'indicateur doit être égale à 0,03.

Façons d’exprimer l’acidité. La manière traditionnelle d'exprimer l'acidité du suc gastrique est l'unité de titrage (TU) - le volume d'hydroxyde de sodium 0,1 N nécessaire pour neutraliser les valences acides dans 100 ml de suc gastrique. Ces dernières années, la concentration de HCl dans le suc gastrique a été plus communément exprimée en millimoles pour 1 litre de suc gastrique. On sait que 1 ml de solution de soude 0,1 N équivaut à 1 ml de solution d'HCl 0,1 N (1 TE), soit 0,1 mmol d'HCl, d'où la concentration d'HCl dans 100 ml de jus, exprimée en millimoles d'HCl, est 10 fois moins que dans les unités de titrage.

Exemple. Si la concentration en HCl est de 40 TE, alors cela correspond à une concentration de 4 mmol dans 100 ml de jus, soit 40 mmol dans 1 litre de jus. Ainsi, la valeur numérique de la concentration en HCl, exprimée en unités de titrage, coïncide avec la valeur numérique de la concentration en HCl, exprimée en millimoles pour 1 litre (40 TE = 40 mmol/l HCl).

Débit d'acide chlorhydrique. Cet indicateur reflète la quantité totale d'acide chlorhydrique sécrétée par l'estomac sur une certaine période de temps. Typiquement, le débit est déterminé sur 1 heure et est exprimé en millimoles (1 mmol = 36,5 mg d'acide chlorhydrique).

On les distingue : Débit d'HCl libre ; HCl lié. HCl (produits acides). Ce dernier indicateur est déterminé sur la base des chiffres d'acidité totale. L'heure de débit n'est déterminée que si tout le contenu gastrique est reçu en une heure. La valeur du dégagement acide est calculée par deux formules, qui diffèrent légèrement l'une de l'autre selon l'expression du débit (en milligrammes ou en millimoles) d'HCl.

Pour calculer le taux de HCl en milligrammes, la formule suivante est utilisée : D=V1 x E1 x 0,0365+V2 x E2 x 0,0365+..., où D est le taux de HCl (mg) ; V est le volume d'une portion de suc gastrique (ml) ; E - concentration de HCl (TE); 0,0365 - le nombre de milligrammes de HCl dans 1 ml de jus à une concentration de 1 TE.

Le nombre de trimestres est déterminé par le nombre de portions au cours de l'étude. Pour calculer le débit d'HCl en millimoles (pour HCl, ces valeurs​​sont les mêmes), une autre formule est utilisée : D = ((V1 x E1) / 1000) + ((V2 x E2) / 1000) + ..., où D est le débit de HCl (mmol), et les notations restantes sont les mêmes que dans la formule précédente.

Débit d'acide chlorhydrique ">

Nomogramme pour déterminer le débit d'acide chlorhydrique.

Pour faciliter le calcul du débit-heure de HCl, vous pouvez utiliser un nomogramme. Une règle relie les chiffres appliqués sur les branches opposées de la courbe, correspondant au volume et à l'acidité d'une portion donnée de suc gastrique. A l'intersection de la règle avec la ligne verticale, retrouvez la valeur débitrice, exprimée en milligrammes de HCl ou en millimoles de HCl.

Niveaux d'acidité normaux. Sécrétion basale.
Volume horaire - 50-100 ml

Acide chlorhydrique libre - 20–40 mmol/l
Acide chlorhydrique lié - 10–20 mmol/l

HCl débit-heure - 1,5–5,5 mmol/h
Heure de débit de HCl gratuit - 1,0–4,0 mmol/h
Réaction sécrétoire de l'estomac aux stimuli des tests alimentaires
Volume horaire - 50-110 ml
Acidité totale - 40-60 mmol/l
HCl libre - 20 à 40 mmol/l
HCl lié - 10–20 mmol/l
Résidu acide - 2–8 mmol/l
HCl débit-heure - 1,5–6,0 mmol/h
Débit-heure de HCl gratuit - 1,0–4,5 mmol/h

Réaction sécrétoire de l'estomac à la stimulation sous-maximale de l'histamine.
Volume horaire - 100-140 ml
Acidité totale - 80-100 mmol/l
HCl libre - 65-85 mmol/l
HCl lié - 12–23 mmol/l
Résidu acide - 3,0–12 mmol/l
HCl débit-heure - 8,0–14,0 mmol/h
Heure de débit de HCl gratuit - 6,5–14,0 mmol/h

Réaction sécrétoire de l'estomac à une stimulation maximale par l'histamine.
Volume horaire - 180-220 ml
Acidité totale - 100-120 mmol/l
HCl libre - 90-110 mmol/l
HCl lié - 10–15 mmol/l
HCl débit-heure - 18–26 mmol/h
Débit-heure de HCl gratuit - 16–24 mmol/h

Méthode de perfusion intragastrique. L'un des inconvénients importants de la méthode d'aspiration fractionnée est l'incapacité d'aspirer le jus. Si toutes les règles de l'étude sont respectées, il est possible d'obtenir pas plus de 46,3 à 85 % du suc gastrique sécrété. À cet égard, une méthode de perfusion intragastrique a été proposée. Le principe de la méthode est basé sur la détermination de l'intégralité de l'aspiration de chaque portion de suc gastrique et le calcul de la quantité de production d'acide en tenant compte de la quantité de sécrétion non aspirée.

Méthode de titrage intragastrique. Les méthodes d'aspiration éliminent un élément aussi important de la réponse sécrétoire à la prise alimentaire que la distension gastrique. Pour éliminer ce facteur, une méthode de titrage intragastrique a été développée. Le principe de la méthode est de titrer l'acide produit par l'estomac avec un alcali directement dans la cavité gastrique. Le titrage intragastrique est utilisé pour étudier la réponse sécrétoire de l'estomac à la nourriture ou à l'un de ses ingrédients.

pH-métrie intragastrique. Dans la pratique clinique, une méthode d'étude de la fonction acidogène de l'estomac est activement utilisée, telle que la pH-métrie intragastrique utilisant des sondes de pH originales à une, deux et trois olives conçues par E.Yu. Linara. L'avantage de la pH-métrie est la possibilité d'un enregistrement simultané et continu du pH dans le corps, l'antre de l'estomac et du duodénum dans des conditions de sécrétion gastrique basale et stimulée (histamine).

Méthodes sans doute pour étudier la sécrétion gastrique. L'échantillon de Sali. Elle repose sur le fait que seul le suc gastrique contenant de l'acide chlorhydrique et de la pepsine est capable de digérer le tissu conjonctif (catgut).

0,1 g de bleu de méthylène est versé sur un petit morceau de caoutchouc du préservatif et le caoutchouc est bandé avec du boyau n°5 cuit à la vapeur. Le sac est lavé pour éliminer tout bleu de méthylène restant tombé à sa surface, puis replongé dans un verre d'eau propre pour vérifier l'étanchéité. Si l’eau ne devient pas bleue, le sac est correctement noué et est prêt à l’emploi.

Méthodologie. Le patient avale le sac desmoïde à jeun, puis prend son petit-déjeuner. 3,5 et 20 heures plus tard, trois portions d'urine sont collectées. Déterminez la durée et l’intensité de la coloration urinaire au bleu de méthylène.

Évaluation des résultats. Dans un état hyperacide, les trois portions d'urine sont colorées, la 2e et la 3e étant d'un bleu intense ; avec une sécrétion normale, la 1ère partie n'est pas colorée, la 2ème partie est vert pâle ; Le 3ème est coloré plus intensément. Une légère coloration de seulement la 3ème partie de l'urine est observée dans un état hypoacide.

L’état anacide est caractérisé par l’absence de couleur dans les trois parties de l’urine du patient. Si le contenu gastrique est fortement acide (pH 1,5 ou moins), l'urine est également incolore. Le pepsinogène est converti en pepsine à un pH de 1,5 à 3. Si le pH du suc gastrique est inférieur à 1,5, il ne contient que du pepsinogène, incapable de digestion. Si un état anacide est obtenu à partir du test desmoïde, il est recommandé de répéter l'étude en permettant au patient d'avaler le sac desmoïde après avoir mangé, c'est-à-dire au plus fort de la sécrétion gastrique.

Testez avec un test acide. Acidotest se compose de comprimés de caféine benzoate de sodium et de pilules de test (VNR). Vous pouvez remplacer les comprimés de caféine et de benzoate de sodium dans le test par un petit-déjeuner témoin. Ingrédients du petit déjeuner : bouillie de riz, 100 g de viande, 150 g de pain, un verre de thé.

Méthodologie. Après le petit-déjeuner témoin, le patient est autorisé à avaler une pilule test, après avoir recueilli son urine dans un flacon (urine témoin). Après 1h30, l'urine est à nouveau collectée et les deux flacons sont envoyés au laboratoire. Le contrôle et la deuxième portion d'urine sont dilués avec de l'eau jusqu'à 200 ml ; De chaque portion diluée, 5 ml d'urine sont versés dans un tube à essai, auquel sont ensuite ajoutés 5 ml d'acide chlorhydrique à 25 %.

Évaluation des résultats. Si le suc gastrique contient de l'acide chlorhydrique libre, une couleur écarlate ou rose apparaît dans le deuxième tube à essai. L'acidité approximative du suc gastrique peut être déterminée par l'intensité de la couleur de l'urine dans le deuxième tube à essai. La couleur du tube à essai est comparée à la couleur de l'échelle colorimétrique attachée au test acide.

Étude de la fonction de formation d'enzymes

Méthode Tugolukov unifiée. Principe. Détermination de l'activité protéolytique du suc gastrique par la quantité de protéines décomposées. Réactifs : solution à 2 % de plasma sec dans une solution de HCl 0,1 N. Solution d'acide trichloroacétique à 10 %.

Équipement.
Tubes à centrifuger (gradués avec précision).
Tubes à essai chimiques.
Pipettes d'une capacité de 1, 2 et 10 ml.
Micropipettes d'une capacité de 0,1 ml.
Centrifuger.
Thermostat.

Avancement de l'étude. Le suc gastrique filtré sur filtre en papier est dilué 100 fois (9,9 ml d'eau et 0,1 ml de suc gastrique mesurés à la micropipette). 1 ml de jus dilué (expérience) est placé dans un tube à centrifuger gradué, 1 ml de jus dilué pré-bouilli (témoin) est placé dans l'autre. Ajoutez 2 ml d'une solution à 2% de plasma sec dans les deux tubes à essai et placez-les dans un thermostat à 37°C pendant 20 heures. Passé ce temps, 2 ml d'acide trichloroacétique à 10 % sont versés dans chaque tube à essai, mélangés avec une tige de verre jusqu'à obtenir une suspension homogène et centrifugés 10 minutes à 1500 tr/min.

Calcul. Le degré de digestion des protéines est déterminé par la différence des valeurs des sédiments dans le contrôle et l'expérience, suivie d'un recalcul de la quantité de pepsine. L'indice de digestion du substrat est calculé par la formule : M = (A-B) x (40/A), où M est l'indice de digestion ; A est le volume de sédiments dans le contrôle ; B est le volume de sédiments dans l'expérience ; 40 est une valeur constante établie expérimentalement.

Pour une évaluation plus objective de la fonction acidogène de l'estomac, la production absolue d'acide est calculée par unité de temps, généralement 1 heure (débit-heure). Selon l'indice d'acidité utilisé dans le calcul, il existe des heures de débit d'acide chlorhydrique libre (la quantité d'acide chlorhydrique libre libérée en 1 heure) et des heures de débit d'acide chlorhydrique (la production totale d'acide en 1 heure). On pense que ce dernier indicateur, déterminé sur la base de l'acidité totale, reflète le plus correctement la fonction acidifiante de l'estomac.

L'heure de débit (D-H) est exprimée en millimoles (ou milligrammes) et calculée par la formule : où Y est le volume d'une partie du contenu gastrique, en ml ; E - concentration d'acide chlorhydrique libre, ou acidité totale, titre. unités (mmol/l); 0,001 - le nombre de millimoles d'acide chlorhydrique dans 1 ml de contenu gastrique à une concentration de 1 titp. unités

Pour exprimer le débit (D) en milligrammes, chacun des termes est multiplié par le poids moléculaire de l'acide chlorhydrique (36).

Le nombre de termes dans la formule est égal au nombre de portions de contenu gastrique reçues au cours de l'étude (lors du calcul de D-Ch, il y en a généralement quatre).

La valeur du débit horaire dépend de la tension horaire de sécrétion (volume du jus) et de la quantité d'acidité, vous devez donc obtenir l'extraction la plus complète du contenu gastrique (respect de la condition de pompage continu du jus).

Pour faciliter le calcul du débit, un nomogramme est proposé. Le nomogramme s'utilise comme suit : les nombres sur les branches opposées de la courbe sont reliés par une règle, correspondant au volume et à l'acidité d'une portion de suc gastrique, et la valeur débitrice se trouve à l'intersection de la règle avec une ligne verticale .

La production totale d'acide pendant la période de sécrétion basale est désignée BAO (débit d'acide basal), au maximum - MAO (débit d'acide maximal), avec une stimulation sous-maximale avec l'histamine - SAO. Les valeurs de la MAO dépendent de la masse de cellules pariétales et permettent donc de juger de l'état morphologique de la muqueuse gastrique.

Cet indicateur reflète la teneur en substances alcalines qui ne sont pas liées à l'acide et est déterminé dans le contenu gastrique sans acide chlorhydrique libre. Le principe de détermination repose sur l'ajout d'acide chlorhydrique au contenu gastrique jusqu'à ce qu'une réaction qualitative à l'acide chlorhydrique libre apparaisse.

A 5 ml de contenu gastrique filtré, ajouter 1 goutte d'une solution alcoolique à 0,5 % de diméthylamidoazobenzène (jaune en l'absence d'acide chlorhydrique libre) et titrer avec 0,1 N. solution d'acide chlorhydrique jusqu'à l'apparition d'une couleur rouge. La quantité d'acide consommée, multipliée par 20, correspond à une carence en acide chlorhydrique.

Selon Lambling, une carence en acide chlorhydrique de 40 ml ou plus indique un arrêt complet de la sécrétion d'acide chlorhydrique (achlorhydrie absolue). Si la carence est moindre, l'acide chlorhydrique est libéré et, se combinant avec le mucus, forme de la mucine acide - il s'agit d'une achlorhydrie relative ou chimique.

L'étude de la fonction acidogène de l'estomac signifie la détermination de l'acidité totale, de l'acide chlorhydrique libre et lié, des résidus acides, de la production d'acide chlorhydrique par heure, des composants acides et alcalins de la sécrétion, de la véritable production d'acide chlorhydrique, de l'activité protéolytique et lactique. teneur en acide.

L'acidité totale doit être déterminée dans le contenu gastrique fraîchement obtenu, car ses propriétés changent au repos. Le contenu gastrique est titré avec 0,1 N. solution d'hydroxyde de sodium en présence d'indicateurs. Pour déterminer l'acidité totale, la phénolphtaléine est utilisée comme indicateur, qui reste incolore dans un environnement acide, mais devient rouge dans un environnement alcalin (à pH 8,2-10).

L'acide chlorhydrique libre est dosé en présence de l'indicateur diméthylamidoazobenzène : la couleur rouge qui apparaît lors du titrage du contenu gastrique avec de la soude caustique se transforme en jaune brique (couleur rose jaunâtre ou saumon) à pH 2,4-4,0.

Lors de la détermination de l'acide chlorhydrique lié, l'indicateur est l'acide alizarine sulfonique de sodium, qui, à pH 4,3-6,2, change de couleur du jaune au violet. Dans ce cas, la neutralisation de toutes les valences acides se produit, à l'exception de l'acide chlorhydrique lié.

Détermination de l'acidité du contenu de l'estomac

Réactifs: Solution alcoolique à 1 % de phénolphtaléine, solution alcoolique à 0,5 % de diméthylamidoazobenzène (jaune de méthyle, jaune de diméthyle), solution aqueuse à 1 % d'acide alizarine sulfonique de sodium (rouge d'alizarine S), 0,1 N. solution d'hydroxide de sodium. Toutes ces solutions sont constantes à température ambiante.

Méthode Tepfer. 5 ml de contenu gastrique filtré sont versés dans deux flacons. Au premier, ajoutez 1 à 2 gouttes d'une solution alcoolique à 1% de diméthylamidoazobenzène et 1 à 2 gouttes d'une solution alcoolique de phénolphtaléine. Dans le second - 1 à 2 gouttes d'acide alizarine sulfonique de sodium. Titrer 0,1 N. solution d'hydroxyde de sodium sous agitation constante. Pendant le processus de titrage, le contenu gastrique change de couleur.

Dans la première partie du contenu gastrique noter la quantité d'alcali nécessaire au titrage jusqu'à ce que la couleur rouge initiale vire au rose jaunâtre, ce qui correspond à la quantité d'acide chlorhydrique libre et est détectée par le diméthylamidoazobenzène, ainsi que la quantité totale d'alcali utilisée pour le titrage jusqu'au rose jaunâtre la couleur se transforme en une couleur rouge stable, qui correspond à l'acidité totale et est détectée par la phénolphtaléine.

Dans la deuxième partie du contenu gastrique notez la quantité d'alcali utilisée pour le titrage à partir du moment où la couleur jaune initiale passe au violet (correspond à la somme de toutes les substances réagissant avec les acides, à l'exception de l'acide chlorhydrique lié, et est détectée par l'acide alizarine sulfonique de sodium).

L'acidité totale est déterminée par la quantité millilitres 0,1 N. solution de soude permettant de titrer 100 ml de contenu gastrique (titrage classique). Étant donné que 5 ml de contenu gastrique sont prélevés pour le titrage et que le calcul est effectué pour 100 ml, la quantité d'alcali utilisée est multipliée par 20. Une unité de titrage conventionnelle correspond à une concentration d'acide chlorhydrique de 1 mmol/l.

Méthode Michaelis. Grâce à cette méthode, l'acidité totale, l'acide chlorhydrique libre et lié sont déterminés par titrimétrie ; la définition de cette dernière est conditionnelle.

En l’absence d’acide chlorhydrique libre dans le contenu gastrique, l’acide chlorhydrique lié peut se situer dans les limites normales ou être élevé. L'absence d'acide chlorhydrique non seulement libre, mais également lié, est indiquée par l'apparition d'une couleur violette lorsque l'indicateur acide alizarine sulfonique de sodium est ajouté au contenu gastrique.

En raison du fait que la phénolphtaléine change de couleur non pas dans un environnement neutre, mais dans un environnement alcalin (pH 8,2-10,0), les indicateurs d'acidité totale sont quelque peu surestimés. Par conséquent, il est recommandé d'utiliser du phénol (rouge de phénol) comme indicateur, dont la couleur change à pH 7,9.

Le titrage à l'aide d'indicateurs n'est pas précis, car leur couleur change dans une plage de pH assez large et est évaluée subjectivement. La méthode de l'indicateur peut être contrôlée par des mesures de pH.

Détermination de l'acidité par méthode titrimétrique avec étude de contrôlepHcontenu gastrique. A l'aide de mesures de pH, la fin du titrage est déterminée. Le volume est noté 0,1 N. soude caustique, consacrée au titrage de 5 ml de contenu gastrique à pH 3,0 en présence de diméthylamyloazobenzène pour calculer la quantité d'acide chlorhydrique libre et à pH 8,2 en présence de phénolphtaléine ou à pH 7,9 en présence de phénolroth pour déterminer l'acidité totale.

Lors de la détermination de l'acide chlorhydrique lié avec l'indicateur acide alizarine sulfonique de sodium, la fin du titrage avec apparition d'une couleur violette correspond à un pH de 6,2 (plage de fluctuation du pH de 4,3 à 6,2).

Ainsi, la pH-métrie de contrôle élimine l'évaluation subjective des changements de couleur du contenu gastrique titré en présence d'indicateurs et augmente ainsi la précision de l'étude. Le calcul de la quantité d'acide chlorhydrique libre et lié et de l'acidité totale est effectué à l'aide de la méthode ci-dessus, en tenant compte de la quantité d'hydroxyde de sodium dépensée pour le titrage.

S'il y a une petite quantité de contenu gastrique extrait ou sa couleur inhabituelle en raison d'impuretés de sang, de bile ou de nourriture, vous pouvez essayer de déterminer l'acidité par voie microchimique. L'étude est réalisée avec un contenu gastrique dilué. Placez 1 ml de suc gastrique et 5 ml d'eau distillée dans un verre. Déterminer l'acidité en présence d'indicateurs en titrant 0,1 N à partir d'une microburette ou d'une pipette. solution alcaline caustique. La teneur en acide chlorhydrique libre est égale à la quantité d'alcali utilisée pour titrer le contenu gastrique jusqu'à une couleur jaune brique, multipliée par 100. L'acidité totale est déterminée par la quantité d'alcali utilisée pour titrer le contenu gastrique jusqu'à l'apparition d'une couleur rouge. (en présence de phénolphtaléine), réduit de 0,05 (numéro de correction de l'indicateur) et multiplié par 100 (avec une acidité fortement réduite, une correction de l'indicateur de 0,03 est recommandée).

L'acidité doit être déterminée dans chaque portion de 15 minutes de sécrétion basale et stimulée, ce qui vous permet d'établir le type de courbe d'acide, ce qui est important dans le diagnostic des maladies de l'estomac.

Chez les personnes en bonne santé et chez les personnes atteintes de gastrite normacide, dans la phase de sécrétion stimulée par l'histamine, le taux d'acide chlorhydrique libre augmente à la 30e minute et diminue à la fin de la première heure de l'étude. Dans la gastrite avec insuffisance sécrétoire, une courbe d'acide en retard est observée, lorsque le niveau d'acide chlorhydrique libre n'augmente qu'à la 60e minute. Dans ces cas, il est nécessaire de poursuivre le sondage, car la production maximale d'acide peut être observée à la 90e ou à la 115e minute (le niveau d'acide chlorhydrique libre peut être dans la plage normale) et diminue à la fin de la deuxième heure.

En cas d'insuffisance sécrétoire, une faible courbe d'acide ou une fausse achlorhydrie est également possible, dans laquelle, dans le contexte d'un état anacide, l'acide chlorhydrique libre n'apparaît qu'à la fin de la deuxième heure de l'étude et n'atteint pas un niveau normal. L'insuffisance sécrétoire provoquée par le processus inflammatoire est également indiquée par le type de sécrétion asthénique, c'est-à-dire une lente augmentation du niveau d'acide chlorhydrique libre à la 45e minute et sa diminution en dessous de la normale à la fin de la première heure.

Dans l'ulcère gastrique pendant la période d'exacerbation de la maladie, une courbe d'acide allongée est observée avec une lente augmentation jusqu'à des niveaux élevés d'acide chlorhydrique libre à la fin de la deuxième heure de l'étude.

La présence d'un ulcère duodénal ou du syndrome de Solinger-Ellison est indiquée par une courbe d'acide élevée ou en escalier avec une augmentation des taux d'acide chlorhydrique par rapport à la normale. Dans les cas où il n'y a que des troubles fonctionnels au niveau des organes digestifs, la courbe d'acide se caractérise par des fluctuations irrégulières.

Pour une évaluation plus objective de la fonction acidogène de l'estomac, la notion de débit d'acide chlorhydrique a été introduite, qui caractérise sa quantité libérée par unité de temps (1 heure) et exprimée en millimoles. Pour déterminer le débit-heure d'acide chlorhydrique, la formule suivante est proposée :

Dch=V 1 *E 1 *0,001+V 2 *E 2 *0,001+V 3 *E 3 *0,001+V 4 *E 4 *0,001

où Dch est le débit d'acide chlorhydrique, mmol ; V est le volume d'une partie du contenu gastrique, en ml ; E est la concentration d'acide chlorhydrique de la même portion, unités de titrage ; 0,001 - la quantité d'acide chlorhydrique dans 1 ml de contenu gastrique à une concentration de 1 mmol/l.

Étant donné que la valeur du débit horaire dépend de la tension de sécrétion horaire, il faut s'efforcer d'obtenir l'extraction la plus complète du contenu gastrique.

Selon l'indicateur de l'acidité du contenu gastrique utilisé dans le calcul, il existe débit d'acide chlorhydrique libre et lié, ainsi que l'acidité totale (produits acides), qui est déterminée en fonction de la valeur de l'acidité totale. Il est d'usage de déterminer le débit d'acide chlorhydrique libre. L'heure de débit de la sécrétion basale d'acide chlorhydrique est désignée BAO (débit d'acide basal - production d'acide basal), et avec une stimulation maximale de l'histamine - MAO (débit d'acide maximal - production d'acide maximale). Le débit d'une portion reçue à jeun est désigné comme le débit à jeun d'acide chlorhydrique. L'heure de débit d'acide chlorhydrique avec stimulation histaminique sous-maximale est désignée SAO (débit d'acide sous-maximal - production d'acide sous-maximale).

Dans la pratique de laboratoire, pour faciliter la détermination du débit horaire d'acide chlorhydrique, on utilise le nomogramme de V.V. Kalinichenko et autres. Dans ce cas, les chiffres indiquant le volume et l'acidité d'une partie donnée du contenu gastrique, situés en face les branches de la courbe, sont reliées par une règle. A l'intersection de la règle avec l'axe vertical central, on trouve la valeur du débit.

Les indicateurs normaux de sécrétion gastrique sont présentés dans le tableau.

Indicateurs normaux de la fonction sécrétoire gastrique

Indicateurs

Jeûne (valeurs maximales)

Sécrétion basale

Réponse constante à l'histamine

sous-maximal

maximum

Volume, ml

Acidité totale, mmol/l

HCl libre, mmol/l

HCl lié, mmol/l

Débit-heure d'acidité totale, mmol/h

Débit-heure de HCl libre, mmol/h

Débit-heure de HCl lié, mmol/h

Volume de sécrétion acide du composant, ml

Débit-heure réel de HCl, mmol/h

Volume du composant alcalin, ml

Débit-heure d'hydrocarbure, mmol/h

Note. La sécrétion horaire débitée à jeun est calculée par rapport au volume de la portion correspondante de suc gastrique.

Détermination de la carence en acide chlorhydrique

L'absence d'acide chlorhydrique libre dans le contenu gastrique indique une inhibition de la formation d'acide, qui est évaluée par une carence en acide chlorhydrique. La carence en acide chlorhydrique est déterminée en titrant le contenu gastrique avec 0,1 N. une solution d'acide chlorhydrique en présence d'un indicateur (solution alcoolique à 1% de diméthylamidoazobenzène) jusqu'à l'apparition d'acide chlorhydrique libre.

Une carence en acide chlorhydrique indique pour la teneur en composants alcalins non liés par un acide. Il est généralement admis qu'une carence maximale en acide chlorhydrique égale à 40 unités de titre indique un arrêt de la sécrétion d'acide chlorhydrique (achlorhydrie absolue). Avec une carence moindre, l'acide chlorhydrique est sécrété par les cellules pariétales, mais en raison de la liaison par des composants alcalins, il n'est pas détecté sous forme libre ( achlorhydrie relative).

Une achlorhydrie relative peut également être observée en l'absence d'acide chlorhydrique libre et lié. Cette option est possible dans les cas où tout l'acide chlorhydrique est neutralisé avec du bicarbonate de sodium.

À propos de la disponibilité achlorhydrie absolue ne peut être jugé qu’après une stimulation maximale par l’histamine. Une telle achlorhydrie est observée principalement dans l'anémie par déficit en B 12. Avec l'achlorhydrie absolue, le pH intragastrique ne diminue pas sous l'influence de l'histamine. La stimulation maximale par l'histamine ne pouvant être utilisée que dans des cas exceptionnels, il est conseillé d'utiliser la mesure du pH intragastrique pour le diagnostic.

Une carence importante en acide chlorhydrique indique la présence de produits de dégradation des tissus (pus, sang) dans le contenu gastrique.

Évaluation de la sécrétion basale

La quantité de sécrétion basale d'acide chlorhydrique libre chez les personnes atteintes de gastrite anacide et hypoanaacide, de cancer de l'estomac est de 0 à 1 mmol/h, chez les personnes en bonne santé et celles souffrant de gastrite normacide - de 1 à 4 mmol/h, d'ulcère gastrique ou duodénal - 4 -5 mmol/h.h (plus de 5 mm/h est généralement caractéristique d'un ulcère duodénal), syndrome de Solinger-Ellison - 10-20 mmol/h.

Estimation de la sécrétion maximale

Sécrétion maximale égale à zéro - une véritable achlorhydrie est observée dans la gastrite atrophique, le cancer de l'estomac (dans ces cas, le reflux du contenu duodénal doit être exclu). Une valeur MAO de 1 à 18 mmol/h indique une production d'acide insuffisante en cas de gastrite ou de cancer de l'estomac ; 18 - 20 mmol/h - pour une production normale (chez les personnes en bonne santé ou chez les personnes souffrant de gastrite normacide) ; 20-26 - pour augmenter la production d'acide chez les patients souffrant d'ulcère duodénal, syndrome de Solinger-Ellison.

Évaluation des produits acides basée sur le ratio DHA et MAO

Chez les personnes en bonne santé, le rapport VAO:MAO est de 1:6.

Avec une inhibition fonctionnelle et une diminution de la réactivité des cellules pariétales, une diminution de la sécrétion basale est observée, la production maximale d'acide est normale, BAO:MAO - 1:10 ou 1:12.

En cas d'atrophie ou de lésions des cellules pariétales, la production d'acide basale et maximale est réduite. Le rapport VAO:MAO peut être soit augmenté (si l'inhibition fonctionnelle prédomine), soit diminué (avec une atrophie prononcée des cellules pariétales).

Avec une stimulation neurohumorale accrue des cellules pariétales (état hyperréactif), une augmentation de la VAO est observée avec une MAO normale ou légèrement augmentée ; VAO:MAO = 1:2 ou 1:3.

Avec l'hyperplasie des glandes gastriques, avec une augmentation du nombre de cellules pariétales, la sécrétion maximale et basale augmente.

Détermination des composants acides et alcalins de la sécrétion gastrique

Lors de l'étude du débit d'acide chlorhydrique, la partie de l'acide chlorhydrique qui est neutralisée dans l'estomac par le bicarbonate n'est pas déterminée. Pour prendre en compte la partie neutralisée de l'acide chlorhydrique, le volume des composants acides et alcalins et le débit réel d'acide chlorhydrique sont déterminés.

Composant acide calculé à l'aide de la formule de Thomson-Wein

P=V*(0,219+4,88*H+),

où P est le volume du composant acide, ml ; V est le volume de suc gastrique dans la prise d'essai, en ml ; H + - acidité totale dans une portion donnée, mmol/l ; 0,219 et 4,88 sont des valeurs constantes.

Composant alcalin déterminé par la formule :

où NP est le volume du composant alcalin, ml ; V est le volume d'une portion de suc gastrique, ml ; P est le volume du composant acide dans une portion donnée, ml.

Connaissant le volume du composant acide, vous pouvez calculer le débit réel d'acide chlorhydrique à l'aide de la formule suivante :

D vh =З*160*0,001

où Dvh est le débit réel d'acide chlorhydrique, mmol ; P est le volume du composant acide, ml ; 160 - la valeur de la concentration constante d'acide chlorhydrique sécrétée par les cellules pariétales de l'estomac ; 0,001 est la quantité d'acide chlorhydrique dans 1 ml de contenu gastrique à une concentration de 1 mmol/l.

En pratique, le volume du composant acide et le débit réel d'acide chlorhydrique sont déterminés à l'aide du nomogramme suivant.

Les indicateurs du débit réel d'acide chlorhydrique incluent tous les produits acides, y compris la quantité d'acide chlorhydrique neutralisée par le bicarbonate de suc gastrique. Le véritable taux de production d’acide chlorhydrique est supérieur à celui de la MAO.

Les propriétés alcalines de la sécrétion des glandes gastriques dépendent de la présence de mucus et de bicarbonate. La plupart des auteurs considèrent que la concentration de bicarbonate dans la sécrétion alcaline est constante. Selon la littérature, elle est de 20 à 45 mmol/l. Par conséquent, connaissant le volume du composant alcalin, le débit d'hydrocarbure est déterminé à l'aide de la formule de Yu. I. Fishzon-Ryss :

D hydr =N*P*C*0,001,

où D hydr. - débit d'hydrocarbure, mmol/h ; C est la concentration en bicarbonate, prise comme valeur constante, 45 mmol/l ; NP - volume de composant alcalin, ml.

Chez les patients atteints d'ulcère duodénal, la composante acide mais aussi alcaline de la sécrétion augmente.

Estimation de la composante alcaline de la sécrétion et du véritable débit horaire de l'acide chlorhydrique

Par la quantité de sécrétion du composant alcalin, on peut juger de la gravité de la maladie et du degré de compensation de la fonction sécrétoire de l'estomac dans des conditions hyperacides.

Si, à des débits horaires réels élevés d'acide chlorhydrique, le niveau du composant alcalin est également élevé, un état hyperacide compensé se produit. Dans les cas où, avec un débit réel élevé d'acide chlorhydrique, la teneur en composant alcalin est légèrement augmentée, on peut parler de sous-compensation. Une diminution de la production du composant alcalin dans un état hyperacide indique une décompensation et la possibilité de développer un ulcère gastroduodénal de l'estomac ou du duodénum.

Ainsi, un niveau accru de substances alcalines dans le contenu gastrique indique une évolution plus douce des maladies accompagnées d'une acidité élevée et, à l'inverse, un faible niveau de composant alcalin indique une évolution plus sévère de la maladie.

L'une des méthodes d'étude de la sécrétion gastrique consiste à déterminer le taux de sécrétion d'ions hydrogène à l'aide d'un test d'histamine ou de pentagastrine maximale.

La recherche est menée comme suit. Le patient avale à jeun une sonde gastrique dont l'extrémité doit être située dans la partie la plus basse de l'estomac (sa position est contrôlée par fluoroscopie), ce qui permet une aspiration maximale du suc gastrique. Une partie de la sécrétion à jeun est aspirée pendant 5 minutes et rejetée. Le patient reçoit indépendamment le suc gastrique de la sécrétion basale horaire en l'aspirant régulièrement avec une seringue. 30 minutes après le début du prélèvement du suc gastrique, 1 ml de solution de diphenhydramine à 1 % est injecté par voie intramusculaire.

Après avoir reçu une heure de sécrétion basale, une solution à 0,1 % de dichlorhydrate d'histamine est administrée par voie sous-cutanée à raison de 0,025 mg/kg de poids corporel. Après 10 minutes, ils commencent à collecter une partie de la sécrétion gastrique maximale sur 1 heure. Mesurer le volume des deux portions horaires obtenues, prélever 20 ml de chaque portion dans des coupelles, plonger l'électrode sonde pH et déterminer le pH. Par la suite, en utilisant les données sur le volume des portions horaires de sécrétion et le pH, le taux de sécrétion des ions hydrogène (H+) est déterminé à l'aide d'un nomogramme.

Presque à pH = 3,15, le taux de sécrétion de H+ = 0. À un pH intragastrique de 0,7 à 2,0, le taux de sécrétion de H + est déterminé à l'aide d'un nomogramme, reliant le volume et le pH du suc gastrique à l'aide d'une règle. L'intersection de la règle avec l'échelle du taux de sécrétion H+ indique la valeur correspondante en millimoles par heure. Aux valeurs de pH de 2,0 à 3,15, le taux de sécrétion de H + est déterminé de la même manière, mais la valeur du pH est réduite de 1,0 et le résultat est réduit de 10 fois (le point décimal est déplacé vers la gauche lieu).

Le taux normal de sécrétion des ions hydrogène dans une partie de la sécrétion basale varie de 0 à 5 mmol/h, la stimulation maximale par l'histamine - de 5 à 20 mmol/h, lors de l'utilisation de pentagastrine - de 9 à 22 mmol/h.

La méthode ci-dessus pour déterminer l'acidité du suc gastrique n'est pas précise, car l'étude de l'acidité du suc gastrique aspiré, dans laquelle le composant acide est neutralisé par le composant alcalin, donne des résultats délibérément sous-estimés. Les erreurs dans la détermination de la quantité de production d'acide chlorhydrique peuvent être dues à une extraction incomplète du suc gastrique. La pH-métrie intragastrique permet d'éliminer ces imprécisions.

IntragastriquepH-la mesure est effectuée à l'aidepH-sonde. Il est conseillé d'utiliser une sonde pH à deux canaux, qui permet de mesurer le pH directement au niveau de la paroi de l'estomac, c'est-à-dire de déterminer l'acidité primaire au niveau du fond de l'estomac, là où la sécrétion a une réaction acide, et dans la zone du pylore, où ses glandes sécrètent une sécrétion alcaline, qui est normalement capable de neutraliser l'acide. L'enregistrement simultané de la valeur du pH dans les parties indiquées de l'estomac permet d'étudier la fonction sécrétrice d'acide et la capacité alcalinisante du suc gastrique.

La sonde utilisée pour la mesure du pH a une épaisseur de 5 mm, une longueur d'environ 1,5 mm et est recouverte d'un couvercle en plastique souple et lisse. A l'extrémité de la sonde se trouve une olive métallique dans laquelle sont montées des électrodes (antimoine et calomel). Une sonde pH est insérée à jeun, à environ 0,7 m, avec une électrode située dans le corps de l'estomac et l'autre dans la grotte pylorique. Il est conseillé d'insérer la sonde sous contrôle radiologique. Il est connecté à un pH-mètre spécial - l'acidomécanographe Linara ou à un pH-mètre de laboratoire converti, dans lequel sont montées deux plages de mesure pour le corps de l'estomac et la grotte pylorique. Normalement, à jeun, le pH dans le corps de l'estomac est de 5,0 à 6,0, dans la grotte pylorique - 7,0, ce qui indique un repos physiologique de la sécrétion gastrique.

Selon certaines données, les fluctuations suivantes des valeurs de pH de la sécrétion basale du corps de l'estomac sont possibles : 0,8-1,5 - hyperacidité (estomac acide ou irritable) ; 1,6-2,0 - normacidité ; 2.1-5.9 - hypoacidité ; 6,0 et plus - achlorhydrie.

L'établissement d'un pH bas ne fournit pas encore d'informations complètes sur la force de la fonction acidogène de l'estomac. Pour différencier les faibles taux de sécrétion basale (hyperacidité, normacidité), on utilise non pas des stimulants, mais des superpresseurs de sécrétion gastrique. Dans ces cas, un test d'atropine est utilisé.

Après avoir inséré une sonde de pH dans l'estomac et effectué une surveillance radiographique pour garantir son placement correct, le pH basal fondal et antral du patient est enregistré en 1 heure (4 à 6 déterminations à intervalles de 10 à 15 minutes).

Si un pH basal faible (inférieur à 2,0) est détecté, 1 ml de sulfate d'atropine à 0,1 % est injecté par voie sous-cutanée et l'enregistrement du pH (pH séquentiel) se poursuit de la même manière pendant l'heure suivante. Les résultats du test d'atropine sont évalués non seulement par le degré et la durée de l'augmentation du pH, mais également par la différence entre les valeurs moyennes du pH basal et séquentiel (les changements de pH à court terme observés avec le reflux duodénogastrique ne sont pas pris en compte). Dans les cas où le pH intragastrique augmente lors de la dernière mesure, deux mesures supplémentaires sont prises (à intervalles de 10 à 15 minutes) pour exclure le reflux duodénogastrique.

En fonction du degré d'augmentation du pH, on distingue les réactions suivantes au test à l'atropine :

  • pH supérieur à 2,0 - fort ;
  • de 1,0 à 2,0 - moyenne ;
  • de 0,5 à 1,0 - faible ;
  • moins de 0,5 - insignifiant ;
  • aucun changement - négatif.

Si la différence entre les valeurs moyennes du pH basal et séquentiel est de 0,6, le test à l'atropine est considéré comme faiblement positif, 0,02 est considéré comme négatif. Si la différence de pH est supérieure à 0,6, elle est positive.

L'évaluation du test d'atropine est possible non seulement par les valeurs moyennes des mesures horaires basales et séquentielles du pH, mais également par la valeur maximale du pH dans le fond de l'estomac après l'administration d'atropine. Cette méthode de détermination du pH intragastrique est plus informative, cependant, avec le reflux duodéno-gastrique, des résultats secondaires sont possibles.

Sur la base de la capacité alcalinisante des sécrétions gastriques au niveau de la grotte pylorique, on les distingue :

  • formation d'acide compensée, lorsque le pH de l'antre dépasse le pH du corps de l'estomac et est proche du neutre ;
  • formation d'acide décompensée avec une légère différence entre le pH de l'antre (zone neutralisante) et du corps de l'estomac (zone acidogène) ;
  • formation d'acide partiellement compensée avec une différence entre le pH de l'antre et du corps de l'estomac de 1,0 à 1,5.

Ainsi, le test à l'atropine permet d'identifier parmi les patients présentant un faible pH intragastrique à jeun un groupe d'individus atropine-résistants chez lesquels un sondage fractionné révèle un débit important d'acide chlorhydrique en raison de sa forte sécrétion. Chez les patients sensibles à l'atropine, le volume de sécrétion d'acide chlorhydrique est moins élevé. Le test d'atropine augmente le contenu informatif de la pH-métrie intragastrique et sert de test diagnostique et pronostique pour les ulcères duodénaux et d'autres types d'hyperchlorhydrie gastrique. Il est utilisé pour sélectionner une méthode chirurgicale pour traiter les ulcères gastroduodénaux.

Le degré de compensation d'un estomac acide peut être jugé sur la base d'une pH-métrie intragastrique avec une charge de bicarbonate de sodium - test alcalin.

Détermination de l'acide lactique

En plus de l'acide chlorhydrique, le contenu de l'estomac peut contenir d'autres acides, parmi lesquels l'acide lactique présente le plus grand intérêt clinique. Il apparaît à la suite de troubles métaboliques dans une tumeur maligne affectant l'estomac, ou lors de processus stagnants dans l'estomac, en l'absence d'acide chlorhydrique libre et en présence de bâtonnets de fermentation lactique.

Les tests qualitatifs pour la détection de l'acide lactique sont basés sur l'apparition d'une couleur jaune-verdâtre lorsqu'il interagit avec le chlorure ferrique suite à la formation de lactate de fer.

Détermination de l'activité de la pepsine

La détermination de l'activité de la pepsine repose sur des méthodes indirectes d'étude de la capacité digestive du contenu gastrique. Plusieurs méthodes ont été proposées, qui diffèrent les unes des autres par l'utilisation de différents substrats pour la digestion et le temps de contact avec l'enzyme. Afin de déterminer l'activité protéolytique totale, vous pouvez prendre du suc gastrique natif ou du suc gastrique avec un tampon qui assure une action optimale de la pepsine.

La méthode la plus courante pour déterminer l’activité de la pepsine est Méthode Tugolukov. Avec son aide, vous pouvez déterminer la pepsine du suc gastrique, l'uropepsinogène et le pepsinogène dans le sang, ce qui vous permet de comparer les données obtenues. La teneur en pepsine du contenu gastrique est jugée par la quantité de protéines plasmatiques sèches digérées.

Lors de la détermination du débit horaire (tension horaire) de pepsine, sa teneur en millilitres dans une portion donnée est multipliée par le volume d'une portion de contenu gastrique, puis les indicateurs obtenus en 1 heure sont ajoutés.

La deuxième méthode unifiée pour déterminer l'activité de la pepsine est Méthode Anson modifiée par Chernikov. Elle repose sur l’étude de la capacité digestive de la pepsine du suc gastrique en présence d’hémoglobine comme substrat.

Les valeurs normales de l'activité de la pepsine doivent être dérivées des tests des donneurs dans chaque laboratoire, car elles dépendent de l'activité de la pepsine cristalline utilisée pour construire la courbe d'étalonnage.

Il est également utilisé pour déterminer l’activité de la pepsine. La méthode de Hunt, dans lequel la protéine du plasma sanguin est utilisée comme substrat. La mesure est effectuée sur un colorimètre médical après ajout du réactif de Folin ; pour l'évaluation, une table d'étalonnage construite en étudiant des solutions étalons de pepsine est utilisée. Lors de la détermination de la quantité de pepsine libérée par heure, la tension horaire est prise en compte.

Teneur en pepsine chez les personnes en bonne santé dans une portion, la sécrétion basale varie de 50 à 300 mg/h, avec une stimulation maximale par l'histamine - de 100 à 900 mg/h. Il existe un parallélisme entre la production d'acide chlorhydrique et la teneur en pepsine. En cas d'ulcère gastrique et d'ulcère duodénal, ces indicateurs sont élevés, dans la gastrite chronique avec insuffisance sécrétoire ils sont réduits, mais en cas d'achélie, l'absence de pepsine n'est pas observée.

Détermination intragastrique de l'activité protéolytique du suc gastrique

Pour l'étude intragastrique de l'activité protéolytique du suc gastrique, un tube de chlorure de polyvinyle avec un substrat (albumine technique ou protéine de poulet coagulée), placé sur un cylindre métallique soudé à un câble en acier rigide, est inséré à travers une sonde. 1 heure après l'insertion du tube avec le substrat, celui-ci est retiré de l'estomac par un tube, une dose sous-maximale ou maximale d'histamine est administrée par voie parentérale et le substrat est réintroduit pendant 1 heure pour évaluer la gravité de la protéolyse dans l'estomac non seulement pendant la période de sécrétion basale, mais aussi stimulée par l'histamine.

Degré de protéolyse intragastrique est estimé par le volume de substrat digéré et exprimé en microgrammes par heure. Après avoir retiré le tube de l'estomac, la quantité de protéines digérées est déterminée, puis elle est placée dans 20 N. solution d'acide chlorhydrique pour évaluer la digestion supplémentaire de l'albumine, qui se produit en raison de la pepsine qui a pénétré dans le substrat à partir du contenu gastrique. L'intensité de la protéolyse supplémentaire de l'albumine est déterminée par la concentration de pepsine dans l'estomac. Par conséquent, la quantité de substrat digéré, déterminée immédiatement après son séjour d'une heure dans l'estomac, juge du degré de protéolyse intragastrique, et les données sur la protéolyse supplémentaire du substrat reflètent la concentration de pepsine dans le contenu de l'estomac.

Tant dans des conditions de sécrétion basale qu'après une stimulation histaminique sous-maximale chez les patients souffrant d'ulcère duodénal, la protéolyse supplémentaire est plus élevée que chez les personnes en bonne santé.

L'étude intragastrique de l'activité protéolytique du suc gastrique a une valeur diagnostique importante, car elle reflète l'état fonctionnel de l'appareil sécrétoire de l'estomac dans des conditions aussi proches que possible des conditions physiologiques.

L'activité protéolytique totale du suc gastrique peut être déterminée à l'aide de la méthode microexpress de A. A. Pokrovsky.

Définition du facteur interne

Le facteur intrinsèque est un composant du mucus gastrique. Il est déterminé de manière simplifiée ( selon la méthode Glass-Boyd), basé sur la précipitation des protéines et l'action de l'acide chlorhydrique et de la soude sur le précipité.

La concentration du facteur intrinsèque normalement à jeun est de 0 à 0,2 g/l, après un petit-déjeuner test chez des personnes en bonne santé, elle est de 0,2 à 0,5 g/l.

Beaucoup la concentration de l'interne facteur dans l'ulcère duodénal, qui est particulièrement prononcé pendant la période interdigestive.

Réduire la quantité de facteur interne observé dans la gastrite chronique et indique une atrophie des glandes gastriques. Une diminution prononcée de la sécrétion de facteur interne indique la possibilité de développer une anémie par déficit en B 12.

Les données obtenues à partir de l'étude du facteur interne n'ont pas de signification indépendante, elles ne font que compléter les résultats de l'étude de la fonction acidogène de l'estomac.

Inspectez les portions reçues du contenu gastrique :

1. Couleur : Le contenu gastrique normal est légèrement grisâtre. Si le suc gastrique que vous recevez est jaune, cela indique que le patient présente un reflux duodéno-gastrique (reflux du contenu du duodénum dans l'estomac) ; du rouge au brun - de la présence de sang, en fonction de la quantité de sang et du degré d'acidité de l'environnement.

2. Consistance : normalement, le contenu gastrique est liquide, selon la quantité de mucus : plus il y a de mucus, plus le contenu gastrique est visqueux et visqueux. Une grande quantité de mucus peut indiquer la présence d'une gastrite. Le mucus flottant à la surface ou localisé sous forme de flocons grossiers et de grumeaux provient de la bouche et du nasopharynx.

3. Odeur : le contenu gastrique normal a une odeur légèrement aigre, qui rappelle celle du pain. Une odeur putride se produit lorsque les protéines pourrissent (avec stagnation due à une sténose pylorique, désintégration d'une tumeur cancéreuse), lorsque la concentration d'acide chlorhydrique diminue en raison des produits de fermentation résultants - acides butyrique, acétique et lactique.

4. Impuretés : dans le contenu de l'estomac à jeun, des restes de la nourriture d'hier se forment parfois (avec sténose pylorique), ce qui indique une violation de sa vidange.

Commencez une étude chimique du suc gastrique - la fonction acidifiante de l'estomac :

Dans chaque portion, par titrage, déterminez l'acide chlorhydrique libre (sous forme d'ions hydrogène et chlore dissociés), l'acidité totale (la somme de toutes les valences acides de l'estomac), l'acide chlorhydrique lié (situé en relation avec les molécules de protéines) et acide lactique.

Commencez par quantifier le total

acidité du suc gastrique :

La détermination quantitative de l'acidité totale du suc gastrique est déterminée par titrage avec une solution d'hydroxyde de sodium 0,1 N en présence de l'indicateur phénolphtaléine. L'acidité est exprimée par le nombre de ml de soude nécessaire pour neutraliser 100 ml de jus. Les résultats sont enregistrés en unités de titrage ou mmol/l (unités SI), qui sont identiques en termes numériques. Mesurez 10 ml de suc gastrique filtré à partir d'une portion dans le flacon, ajoutez 2 gouttes de solution à 0,5% de phénolphtaléine. Versez de la soude 0,1 N dans une burette. Titrer avec une solution d'hydroxyde de sodium 0,4 N à la burette jusqu'à l'apparition d'une légère couleur rose qui ne disparaît pas en 1/2 - 1 minute. Notez combien de ml d'alcali ont été utilisés pour le titrage, puisqu'il est nécessaire de le convertir en 100 ml de jus ; multipliez la quantité d'alcali utilisée pour le titrage par 10. Exemple de calcul : si le titrage de 10 ml de jus a nécessité 5 ml de soude 0,1 N, alors l'acidité totale est égale à 5X10 = 50 ml d'alcali soit 50 soit 50 i.e. dans 100 ml de jus. Ainsi, déterminez l'acidité totale dans toutes les portions reçues (de 1 à 12), notez les résultats.


Déterminer la quantité d'acide chlorhydrique libre :

La quantité d'acide chlorhydrique libre dans le suc gastrique est mesurée par la quantité de ml d'hydroxyde de sodium 0,1 N dépensée pour neutraliser 100 ml de suc gastrique en présence de l'indicateur diméthylaminoazobenzène. A 10 ml de jus, ajouter 2 gouttes d'une solution alcoolique à 0,5 % de diméthylaminoazobenzène et titrer avec une solution de soude 0,1 N jusqu'à l'apparition d'une couleur orange rappelant la couleur du saumon (en présence d'acide chlorhydrique libre, le diméthylaminoazobenzène acquiert une couleur rouge ). Ensuite, vous devez également recalculer les données obtenues pour 100 ml de jus. Si, lors du titrage de 10 ml de jus, 3 ml d'indicateur ont été utilisés, alors pour 100 ml - 10 fois plus, soit 3 X 10 = 30 ml ou 30 soit

Ces études peuvent être réalisées EN MÊME TEMPS :

À 10 ml de jus, ajoutez 2 gouttes de diméthylaminoazobenzène et 2 gouttes de phénolphtaléine. Titrer la solution de soude caustique 0,1 N jusqu'à coloration saumonée (1 trait de la quantité de soude caustique dépensée correspond à la quantité acide chlorhydrique libre), puis titrer jusqu'à une couleur jaune citron (le 2ème trait permet de déterminer acide chlorhydrique lié), puis titrer jusqu'à ce que la couleur devienne rose (le 3ème trait correspond à acidité totale). Nous multiplions également les indicateurs obtenus par 10 (convertis en 100 ml de jus). La moyenne arithmétique entre 2 et 3 points est considérée comme appropriée acide chlorhydrique général.

À l’aide de cette méthode, déterminez l’acidité totale, l’acide chlorhydrique libre, lié et total dans les 12 portions et notez les résultats.

Dans la phase de sécrétion basale (avant l'introduction du petit-déjeuner), le niveau d'acidité totale est normal jusqu'à 40, c'est-à-dire l'acide chlorhydrique libre - jusqu'à 20. Après stimulation selon Leporsky avec du bouillon de chou, les valeurs maximales normales de L'acidité totale est de 40 à 60, c'est-à-dire les acides chlorhydriques libres – 20 à 40, c'est-à-dire après une stimulation sous-maximale avec l'histamine, l'acidité totale augmente à 80-100, c'est-à-dire l'acide chlorhydrique libre – 60-85. Avec une stimulation maximale par l'histamine, l'acidité totale est de 100 à 120, c'est-à-dire que l'acide chlorhydrique libre est de 90 à 110.

Si vous avez détecté une augmentation des niveaux d'acidité chez le patient examiné (hyperacidite), il est nécessaire d'exclure l'ulcère duodénal ou la duodénite chez ce patient. Une diminution (hypoaciditas) ou une absence totale d'acide chlorhydrique libre (anaciditas) est observée dans le cancer de l'estomac, la gastrite chronique avec sécrétion réduite et la cholécystite chronique. Si vous avez mené une étude selon Leporsky avec un petit-déjeuner au chou et avez reçu des valeurs nulles d'acide chlorhydrique libre, il est nécessaire de mener une étude de la sécrétion gastrique avec administration sous-cutanée d'histamine. Si, après son administration, l'acide chlorhydrique libre n'apparaît pas (il n'y a pas de réaction à l'introduction de l'histamine), cela indique de manière très fiable un état anacide.

Commencez à tracer des courbes d’acidité par concentration d'acide chlorhydrique libre.

a) Sélectionnez l'échelle de construction: le temps est porté selon l'axe des abscisses, tous les 5 mm de l'axe correspondent à 15 minutes de recherche. L'ordonnée est la quantité d'acide chlorhydrique libre en unités de titrage, 1 mm sur l'axe correspond au nombre d'unités de titrage d'acide chlorhydrique libre.

b) Construire un graphique- courbe d'acidité.

Évaluer le type d'acidité : chez une personne en bonne santé, après l'introduction d'un stimulus - un petit-déjeuner test - on observe une augmentation progressive de l'acidité. Son augmentation maximale est observée à la 55ème minute. Il existe plusieurs types de courbe d'acidité :

· type excitable, lorsque la concentration d'acide chlorhydrique libre atteint rapidement des niveaux élevés et diminue progressivement ;

· le type asthénique représente une augmentation rapide et une diminution tout aussi rapide de la concentration d'acide chlorhydrique libre jusqu'à 0 (concentration maximale à 20-30 minutes) ;

· type inerte et inhibiteur - une augmentation lente de la concentration et une diminution lente, et la concentration maximale d'acide chlorhydrique libre est considérablement réduite au-delà de la durée de l'étude ;

· quatrième type de courbe - l'acidité reste constamment à un niveau élevé ;

· cinquième type de courbe - l'acidité reste constamment à un niveau bas, avec pratiquement aucune réaction au stimulus.

Chez une personne en bonne santé, les indicateurs d'acide chlorhydrique total et libre dans le suc gastrique changent en parallèle. La différence entre eux ne dépasse pas 10-15, c'est-à-dire Un écart entre l'acidité totale et l'acidité libre supérieur à 15, c'est-à-dire indique une augmentation de la quantité d'acides organiques ou de produits protéiques (protéines alimentaires, exsudat inflammatoire, produits de dégradation des tumeurs cancéreuses).

Pour une évaluation plus objective de la fonction acidogène de l'estomac, calculez débit-heure d'acide chlorhydrique.

Débit d'acide chlorhydrique- la quantité d'acide libérée par unité de temps.

Heure de débit- la quantité d'acide produite par l'estomac en une heure.

Calculez le débit d'acide chlorhydrique en mg dans chaque portion à l'aide de la formule :


D= (VE X 36,5) / 1000, où

V est la quantité de suc gastrique reçue sur une certaine période de temps ;

E est le niveau d'acide chlorhydrique libre pendant le même temps en unités de titrage ;

36,5 - poids moléculaire relatif de l'acide chlorhydrique.

Exemple de calcul. Dans 1 portion, la quantité de jus obtenue est de 40 ml, la quantité d'acide chlorhydrique libre dans cette portion est de 12, c'est-à-dire le débit d'acide chlorhydrique dans 1 portion :

D= 40 X 12 X 36,5 / 1000 (mg)

De même, nous calculons le débit d'acidité totale, où E est la quantité d'acidité totale dans chaque portion en unités de titrage.

Calculez le débit d'acide chlorhydrique et l'acidité totale dans chaque portion (de 1 à 12), procédez au calcul du débit d'acide chlorhydrique, c'est-à-dire la quantité d'acide libre libérée par heure dans la phase de sécrétion basale (avant l'introduction du petit-déjeuner ), en phase I tension horaire et en phase tension 2 heures. Additionnez le débit d'acide chlorhydrique en 1 portion avec le débit d'acide chlorhydrique en 2, 3, 4 portions, et obtenez le débit d'acide chlorhydrique dans la phase de sécrétion basale. Résumez ensuite la production d'acide chlorhydrique en 5, 6, 7, 8 portions, obtenez l'heure de sortie en phase 1 de la tension de sécrétion horaire, etc.

Normalement, le débit horaire d'acide chlorhydrique libre dans la phase de sécrétion basale est de 50 à 150 mg, dans la phase de tension horaire de 50 à 100 mg.

Une augmentation du débit horaire est typique de l'ulcère gastroduodénal, en particulier avec la localisation de l'ulcère dans le bulbe duodénal, des troubles fonctionnels de l'estomac avec une sécrétion accrue. L'heure de débit diminue en cas de cancer de l'estomac et de gastrite atrophique.

Ces dernières années, une grande importance pratique a été attachée aux données d'acidité générale lors de l'utilisation de la méthode d'intubation gastrique avec une sonde fine, cela est dû au fait que lors du prélèvement du contenu de l'estomac de son sinus (un mélange de sécrétions des glandes fundiques et antrales), le niveau d'acide chlorhydrique libre ne reflétera pas la véritable image de l'état de formation de l'acide gastrique en raison de la liaison de l'acide chlorhydrique par la sécrétion antrale. C'est pourquoi, dans la pratique clinique, une importance croissante est accordée au débit calculé sur la base de l'acidité totale.

La production horaire de production d'acide pendant la période de sécrétion basale est désignée BAO (basal acide oautput), pendant la phase de tension horaire pendant la stimulation sous-maximale - SAO (débit d'acide sous-maximal), pendant la stimulation maximale - MAO (débit d'acide maximal). Les indicateurs MAO et SAO dépendent de la masse des cellules pariétales, ils permettent donc de juger de l'état de la muqueuse gastrique.

Effectuer une réaction d'Uffelmann qualitative

pour l'acide lactique

À 20 gouttes d'une solution à 1 % d'acide phénique (phénol), ajoutez 1 à 2 gouttes d'une solution à 10 % de chlorure ferrique. La solution obtenue est de couleur violette (phénolate de fer). Versez goutte à goutte le suc gastrique dans un tube à essai contenant du phénolate de fer. En présence d'acide lactique, la couleur violette vire au jaune-vert en raison de la formation de fer lactique.

Les méthodes de titrage utilisant des indicateurs colorants ne permettent pas de déterminer avec précision l'acidité du contenu gastrique avec un mélange de bile et de sang ; de plus, l'acidité dans la plage de pH de 3,5 à 7,0 est définie par ces méthodes comme l'anacidité. Des données plus précises sur la véritable acidité du suc gastrique sont fournies en mesurant la concentration d'ions hydrogène libres à l'aide de la pH-métrie intragastrique.

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